Avance: 35.1 %
Actividad Indicador Meta
Anual Avance 1° Trim.
Grado de Avance (%)
1° Trim. 1. Formación de plantel de
reproductores Reproductores acondicionados 50
24 Chitas 10 cabrillas 34 2. Seguimiento de la madurez gonadal en hembras y machos
Hembras con gónadas maduras 30 12 Chitas
2 cabrillas
23
Machos con motilidad
espermática mayor al 50% 30 12 chitas 8 cabrilla 33.5 3. Aplicación de técnicas de reproducción inducida (fotoperiodo, termoperiodo, hormonas)
Puestas en cautiverio 2 3 Chita
OBJETIVO PRINCIPAL
El proyecto de acondicionamiento y reproducción de chita y cabrilla se enmarca dentro del Programa Nacional de Ciencia, Desarrollo Tecnológico e Innovación en Acuicultura 2013-2021 (C+DT+i), que tiene como objetivo principal lograr la reproducción en cautiverio de estas dos especie priorizadas. Dentro de ello, el Instituto del Mar de Perú (IMARPE) como centro de investigación y a través del Laboratorio de Cultivo de Peces ha alcanzado obtener ejemplares reproductores de chita y cabrilla acondicionados al cautiverio en sistemas de recirculación de agua de mar (SRA) y sistemas estáticos, por lo cual el objetivo del presente año es continuar con las investigaciones para lograr la reproducción en cautiverio de ambas especies y estandarizar el cultivo larvario.
RESULTADOS PRINCIPALES
1. Acondicionamiento de reproductores
Los reproductores de chitas y cabreillas se encuentran mantenidos en tanques circulares de fibra de vidrio.
1.1. Calidad del agua.
- En relación a los parámetros físico-químicos de los reproductores de chitas, se observa el comportamiento de la temperatura durante el acondicionamiento de los reproductores. El promedio en el sistema 1 fue de 17,09°C ± 0,60 mientras que en el sistema 2 fue de 16,83°C ± 0,88. Asimismo, el pH promedio en el sistema 1 fue de 7,63 ± 0,39, mientras que en el sistema 2 fue de 7,56 ± 0,33, observándose en la figura la relación directa entre la temperatura del agua con el pH.
Con respecto al oxígeno disuelto el promedio en el sistema 1 fue de 7,86 mg/L ± 0,87, mientras que para el sistema 2 fue de 7,84 mg/L ± 0,77; lo cual amortigua la concentración de CO2 mediante una buena aireación en los tanques de los sistemas de recirculación evitando la acidificación del agua como resultado de la respiración de los peces y del alimento suministrado de manera interdiaria.
- En relación a los parámetros físico-químicos de los reproductores de “cabrilla”, se observa el comportamiento de la Temperatura (°C) durante el acondicionamiento con una media de 19.79 °C. También se observa el comportamiento del pH durante el acondicionamiento, con una media de 7.13 °C. Todos los tanques se encuentran dentro del rango de pH (7.2 a 7.8) para un funcionamiento óptimo del biofiltro (Antoniou et al., 1990).
Con respecto al Oxígeno Disuelto (mg/l) el promedio en el sistema fue de 7.41 mg/L, encontrándose por encima de los niveles críticos. La aireación en los tanques 1, 2, 3 y 4 se realiza mediante piedras difusoras. Los valores de OD no llegan a ser críticos para el cultivo de la especie, en general, para las especies de agua de mar se recomienda mantener una concentración de oxígeno disuelto mínimo de 4 mg/l para mantener un buen desarrollo durante el cultivo (Masser, 1997).
Los promedios de nitrito (0.03 ppm) y nitrato (1.10 ppm) se encuentran en concentraciones que no son tóxicos para el cultivo, mientras que el amonio se encontró en 0.07 ppm, encontrándose muy cerca al rango óptimo de cultivo (0.05ppm).
1.2. Alimentación.
La alimentación en los ejemplares de chita de los tanques S1T1, S1T2, S2T1 y S2T2 fue con trozos de anchoveta Engraulis ringens, a una tasa de alimentación del 4% de la biomasa total de cada tanque de cultivo. Estos trozos son suministrados interdiariamente y suplementados con cápsulas de gelatina que contienen multivitamínico en polvo. durante el primer trimestre del año (Meses 1, 2, 3), el alimento consumido es mayor al 98%.
Los ejemplares de “cabrilla” acondicionados en los tanques 1, 2, 3, y 4 fueron alimentados con pellet de 6 mm Ad-libitum mientras pasaban por un proceso de adaptación fisiológica al sistema de cultivo estático a comienzos del mes de Febrero. Después se cambió el alimento a trozos de anchoveta Engraulis ringens a una tasa de 2.5 % de la biomasa total. Los tanques 1, 2, 3 consumieron el 100 % mientras que el tanque 4 solo del 70 %.
1.3. Muestreo biométrico.
Los reproductores son monitoreados durante muestreos biométricos mensuales. En el caso de las chitas se llevó a cabo 2 muestreos durante el primer trimestre mientras que en las cabrillas solo se realizó 1, esto debido a los problemas con la calidad de agua de mar bombeada. Se registró el peso total, la longitud total y se tomaron las muestras para la evaluación de la madurez ovárica y calidad espermática.
En la Figura 1 se observa la variación de los pesos de las chitas distribuidas en sus diferentes tanques (S1T1, S1T2, S2T1, S2T2) durante el I trimestre (muestreo 1 y 2). Se observa que los ejemplares mantienen su peso a través del tiempo, lo cual hace referencia a que la tasa de alimentación es adecuada para su mantenimiento.
En la Figura 2, se observan los pesos de las “cabrillas” distribuidas en los tanques 1, 2, 3, y 4 durante el I trimestre. Los pesos promedios fueron tanque 1: 209.9 ± 53.8 g; 2: 254.2 ± 56.3 g; 3: 255.5 ± 80.1 g y 4: 213.4 ± 58.6 g, a partir de más número de muestreos se podrá observar si la tasa de alimentación es adecuada para su mantenimiento
Figura 1. Variación de pesos de “chita” Anisotremus scapularis en los tanques (a) S1T1, (b) S1T2, (c) S2T1 y (d) S2T2.
Figura 2. Variación de pesos de “cabrilla” Paralabrax humeralis de los tanques 1, 2, 3 y 4.
.
1.4. Maduración ovárica.
En el I trimestre (muestreo 1 y 2) se observa durante el primer muestreo entre un 90 – 100% de hembras en estadio maduro (III) en ambos sistemas, mientras que en el segundo muestreo se observa en caso del tanque 2 del sistema 1 un 5% de hembras en estadio IV desovante, y hembras en las cuales no se observaron ovocitos en las muestras tomadas (NM) .
La madurez ovárica de las “cabrillas” en el mes de Enero tuvo un retroceso debido a problemas de calidad de agua. En el mes de Febrero (Muestreo 2) se observa que en los tanque 1 y 2 el porcentaje de hembras no maduras es aproximadamente del 50% mientras que en el tanque 4 el porcentaje es del 40%. En el tanque 3 se observa que el 80% de las hembras se encuentra en los estadíos de maduración I y III.
1.5. Calidad espermática.
En el caso de los ejemplares machos de chita se realizó la evaluación de la calidad espermática en los 4 tanques de cultivo pertenecientes a dos sistemas de recirculación, obteniendo una concentración espermática promedio de 1.71 x 1010 esp/mL para el tanque S1T1; de 1.73 x 1010 esp/mL para el tanque S1T2; de 1.40 x 1010 esp/mL para el tanque S2T1 y de 1.53 x 1010 esp/mL para el tanque S2T2. Observando que en el presente trimestre hubo una mejoría en ejemplares pertenecientes al sistema de recirculación 2.
Por otro lado, la motilidad espermática promedio fue de 64,07 % para el tanque S1T1, de 68.74 para el tanque S1T2, de 53.96 para el tanque S2T1 y finalmente de 59.18 para el tanque S2T2. Observando que en el presente trimestre hubo una ligera mejoría en la motilidad espermática en los ejemplares en todos los tanques de cultivo.
En el caso de los ejemplares machos de cabrillas se realizó la evaluación de la calidad espermática, obteniéndose en el presente trimestre una concentración espermática promedio de 4.46 x 1010 esp/mL y una motilidad espermática promedio de 50.15%, siendo los resultados del tanque 1 y 4 los que presentaron mayor concentración espermática con un promedio de 4.80 x 1010 esp/mL y 4.78 x 1010 esp/mL. Por otro lado, el tanque 4 presenta la mayor motilidad espermática con un promedio de 64.35% mientras que el tanque 1 presenta la menor motilidad espermática con un promedio de 33.46%, correspondiente al muestreo 2.
2. CULTIVO LARVARIO 2.1. Parámetros.
- En relación a los parámetros físico-químicos, se observa el comportamiento de la temperatura durante el acondicionamiento de las larvas de chita, el promedio en el mes de Diciembre fue de 20.76 ± 0.78°C, en el mes de Enero fue de 20.61 ± 1.28°C, en el mes de Febrero fue de 21.83 ± 1.29°C y finalmente en el mes de Marzo fue de 21.95 ± 0.96°C. 1 2 500 1000 1500 2000 Muestreo Pe s o (g ) 1 2 500 1000 1500 2000 Muestreo Pe s o (g ) 1 2 400 600 800 1000 Muestreo Pe s o (g ) b) c) d) 1 2 200 400 600 800 1000 Muestreo Pe s o (g ) a) 1 2 3 4 150 200 250 300 350 400 Tanques Pe s o (g )
- Con respecto al oxígeno disuelto el promedio en el mes de Diciembre fue de 7.15 ± 1.18 mg/L, en el mes de Enero fue de 7.28 ± 0.97 mg/L, en el mes de Febrero fue de 6.79 ± 0.57 mg/L y finalmente en el mes de Marzo fue de 6.55 ± 0.28 mg/L, lo cual amortiguó el CO2 mediante una buena aireación en los tanques de cultivo.
- Con respecto al pH el promedio en el mes de Diciembre fue de 7.83 ± 0.18, en el mes de Enero fue de 7.71 ± 0.42, en el mes de Febrero fue de 7.71 ± 0.42 y finalmente en el mes de Marzo fue de 7.30 ± 0.29, lo cual amortiguó el CO2
mediante una buena aireación en los tanques de cultivo.
2.2 Crecimiento larvario.
El seguimiento del crecimiento larval se realizó a través de la medición de la longitud total de 10 larvas de cada tanque de cultivo.
+ Desoves diciembre.
Se continua con el seguimiento del crecimiento del desove obtenido en los últimos días de diciembre (D1, D2 Y D3). El seguimiento larvario duro hasta un poco más de los 60DDE pasado estos días es trasladado a la sala de juveniles. Así mismo, este obtuvo una TCE promedio de 3.24 ± 0.05 tuvo una longitud final promedio de 28.67 ± 4.39 mm.
+ Desoves enero.
En el mes de enero se obtuvieron 3 batch (E1 y E2) el cual tuvo un crecimiento que se ajusta a un modelo exponencial ,este obtuvo una TCE promedio de 3.11 ± 0.22 tuvo una longitud final promedio de 14.49 ± 3.55 mm.
+ Desoves febrero.
En el mes de febrero se obtuvieron 2 batch (F1 y F2) el cual tuvo un crecimiento que se ajusta a un modelo exponencial (Figura 25), este obtuvo una TCE promedio de 4.22 ± 1.09 tuvo una longitud final promedio de 7.95 ± 0.32 mm y actualmente presentan una forma que se muestra en la figura 26 y 27 respectivamente para cada batch.
+ Desoves marzo.
En el mes de marzo se obtuvieron 2 batch (M1 y M2) el cual tuvo un crecimiento que se ajusta a un modelo exponencial (Figura 3), este obtuvo una TCE promedio de 3.06 ± 0.77 tuvo una longitud final promedio de 5.96 ± 2.69 mm y actualmente presentan una forma que se muestra en la figura 29 y 30 respectivamente para cada batch. En la tabla 1 se muestra el crecimiento en longitud de cada desove de chita obtenido en el mes de marzo.
Tabla 1. Crecimiento larvario del desove del mes de marzo del 2015.
Figura 3. Crecimiento larval del desove de marzo de “chita” Anisotremus scapularis.
Figura 4. Larva del mes de marzo M1 de 16 DDE de “chita” Anisotremus scapularis.
2. 3 Sobrevivencia.
La supervivencia durante este último trimestre nos muestra que la mayor cantidad de mortalidad ocurre en el estadio larvario la cual comprende desde los 0 – 50 DDE que es cuando este pasa a la fase juvenil y por el proceso de “destete”. Asimismo, en estos días se trasladan a la sala de
juveniles en donde la mortalidad es casi nula como se puede apreciar en la tabla 6. Además en estos días hubo la presencia de oleaje anómalo dificultando la toma de agua desde el punto de captación que se encuentra en el muelle
Tabla 2. Supervivencia de larvas de “chita” hasta el mes de marzo del 2015.
(*) Su cultivo se realiza en sistema de recirculación (RAS) (**)Su cultivo se realiza en sistema estático
3. CULTIVO DE JUVENILES.
Los juveniles de chita son mantenidos en sistemas de recirculación, aproximadamente a partir de los 60 DDE son trasladados de los sistemas estáticos de cultivo larvario.
Los parámetros de cultivo en las sala de juveniles son monitoreados diariamente. A partir del cual se observa las variaciones en la temperatura, oxígeno disuelto y pH, siendo estos los parámetros más importantes para el cultivo. La temperatura del sistema 1 fue de 22.44 ± 0.33°C y la del sistema fue 20.79 ± 0.36°C. En cuanto al oxígeno disuelto y el pH para el sistema 1 fue de 7.07± 1.13 mg/L y 7.56 ± 0.26 y para el sistema 2 fue 6.74 ± 1.25 mg/L y 7.56 ± 0.22.
BATCH LONG INICIAL LONG FINAL DDE TCE
M1 2.57 ± 0.199 7.86 ± 0.693 16 3.61
M2 2.45 ± 0.055 4.05 ± 0.364 10 2.52
Mes Desove HUEVOS/L
sembrados
N° larvas actuales
% Supervivencia DDE del %
supervivencia
dic 6702 690 10 66*
ene 6020 749 12 52*
feb 1400 940 67 26**
Durante el mes de enero se realizó un muestreo de los juveniles obtenidos en el 2014, el tanque 5 se tienen juveniles de lenguados pertenecientes al proyecto FINCyt N° 236
En mes de febrero se pasaron los nuevos juveniles del de los desoves de diciembre del 2014 y enero del 2015 a la sala de juveniles. También se mantuvieron los juveniles del 2014 (Tabla 3).
Tabla 3. Biometría del mes febrero de los juveniles de chita obtenidos en el 2014.
Dificultades
- Durante el primer trimestre se ha tenido un mayor racionamiento del agua de mar ya que las condiciones de la calidad del agua en el muelle del IMARPE ha disminuido.
- Falta de espacio en el laboratorio..