THE NEED TO AMEND SECTION 12 OF THE 1999 CONSTITUTION

44 4---- RESULTADOSRESULTADOSRESULTADOSRESULTADOS

4.1 4.1---- Resultados analíticosResultados analíticosResultados analíticosResultados analíticos y de operacióny de operacióny de operación y de operación

La operación de la planta piloto se llevó a cabo desde el 12 de Junio de 2011 hasta el 30 de Septiembre de 2011.

Las analíticas más repetidas a lo largo del estudio fueron las correspondientes a la concentración de amonio, nitrato y nitrito en el efluente de la planta piloto, parámetros importantes para el control de la eliminación de nitrógeno. En la figura 17 se muestran los valores analíticos obtenidos de amonio, nitrato y nitrito a lo largo de la experimentación. Como se puede observar en la figura, la gráfica aparece dividida en dos partes bien diferenciadas por una línea vertical. El tiempo previo a esta línea se corresponde con la puesta en marcha y adecuación de la planta piloto. Durante este tiempo la planta fue operada con aireación continua por lo que el efluente mostró amonio en concentraciones próximas a cero, y nitratos con una alta concentración. A partir de este estado hay una adaptación progresiva a la aireación intermitente hasta los valores fijados, 15 minutos de aireación y 75 de paro, que quedó implementada a partir del día 7 de Julio de 2011.

Los valores de amonio y nitrato obtenidos analíticamente en el efluente una vez establecidos los ciclos de marcha paro definitivos oscilan entre 4-6 mg/l. Al final de un ciclo de aireación (en el cual tiene lugar la nitrificación), el amonio tiene baja concentración mientras que el nitrato presenta una concentración alta en el rango de valores mencionado. Lo contrario ocurre justo tras finalizar un ciclo de parada (antes del comienzo del siguiente ciclo de aireación): la concentración de amonio en el reactor se incrementa y la concentración de nitrato disminuye debido al proceso de desnitrificación que ha tenido lugar durante la etapa de anoxia.

Las concentraciones reflejadas en la figura 17 se corresponden con muestras integradas durante un día, por lo que las fluctuaciones mencionadas de concentración de amonio y nitrato debidas a los ciclos de aireación intermitente se ven amortiguadas. Así las muestras integradas presentan valores de amonio, nitrato y nitrito más o menos constantes como refleja la figura 17. También cabe destacar que durante todo el estudio el nitrito mantuvo en valores inferiores a 1 mg N-NO2/l, por lo que se deduce que casi todo el nitrito era nitrificado a nitrato por las bacterias nitritoxidantes.

Figura Figura Figura

Figura 171717---- 17 Gráfica de determinaciones de amonio, nitrato y nitrito durante el periodo de estudioGráfica de determinaciones de amonio, nitrato y nitrito durante el periodo de estudioGráfica de determinaciones de amonio, nitrato y nitrito durante el periodo de estudioGráfica de determinaciones de amonio, nitrato y nitrito durante el periodo de estudio

La demanda química de oxígeno (DQO), nitrógeno total (NT) y fósforo total (PT) se encuentran regulados por legislación (Directiva 91/271/CEE), la cual fija unos requisitos de vertido para estos parámetros que se han de cumplir en el efluente de una EDAR.

- DQO: El límite admisible en DQO se fija en 125 mg/l o un 70% de eliminación. Los valores del efluente de la planta piloto presentan concentraciones muy por debajo del límite admisible (Tabla 14) y presentan porcentajes de eliminación de DQO superiores al 90% (Figura 18). Los valores demuestran la existencia de una población de bacterias heterótrofas bien desarrollada capaz de eliminar la materia orgánica.

- Nitrógeno Total: El nitrógeno total es el parámetro más importante a tener en cuenta en este estudio ya que el objetivo de este estudio es conseguir la eliminación biológica de nitrógeno mediante aireación intermitente.

El límite admisible por la legislación es de 15 mg/l o un porcentaje de eliminación de 70-80%.

Así pues, pese a las condiciones límite de trabajo debidas al bajo TRC aerobio y a la relativamente baja consigna de oxígeno (1ppm) la concentración de nitrógeno total a la salida se encuentra en torno a los 10 mg/l (Tabla 14), lo que nos indica que se está cumpliendo con el objetivo de eliminar nitrógeno ligado a un consumo energético mínimo.

0.00 5.00 10.00 15.00 20.00 25.00 30.00 35.00 14/06/2011 04/07/2011 24/07/2011 13/08/2011 02/09/2011 22/09/2011 C o n ce n tr aci ó n ( m g/ l) C o n ce n tr aci ó n ( m g/ l) C o n ce n tr aci ó n ( m g/ l) C o n ce n tr aci ó n ( m g/ l) Fecha (dd/mm/aaaa) Fecha (dd/mm/aaaa)Fecha (dd/mm/aaaa) Fecha (dd/mm/aaaa)

Valores de Amonio, Nitrato y Nitrito Efluente

NH4 sal NO3sal NO2 sal

Figura Figura Figura

Figura 1818---- 1818 Porcentaje de eliminación de DQO, NPorcentaje de eliminación de DQO, NPorcentaje de eliminación de DQO, NPorcentaje de eliminación de DQO, NTTTT y Py Py Py PTT TTde de de de la planta pilotola planta pilotola planta piloto la planta piloto

- Fósforo total: En un principio la planta piloto había sido diseñada para la eliminación biológica de materia orgánica y nitrógeno, por lo que la determinación de fósforo se realizó para comprobar que éste, no era un factor limitante en el proceso.

Al analizar los resultados del fósforo total y de fosfato, aparece una eliminación de fósforo superior a la esperada, ya que los rendimientos de eliminación se sitúan en torno al 40 % (Figura 18). Estos resultados hacen sospechar que no sólo está actuando la toma de nutrientes por parte de las bacterias heterótrofas y autótrofas para su metabolismo sino que puede existir una población de organismos acumuladores de poli-fosfatos (PAO). La proliferación de bacterias PAO en la planta piloto es posible por la alternancia de condiciones aerobias y anaerobias que favorecen la eliminación de fósforo. La presencia de estos organismos acumuladores de poli-fosfatos se confirmó a través de la observación microscópica mediante tinciones (como se explicará posteriormente en el apartado 4.3.2).

0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 28/08/2011 04/09/2011 11/09/2011 18/09/2011 25/09/2011 % E li m in ac ió n % E li m in ac ió n % E li m in ac ió n % E li m in ac ió n Fecha (dd/mm/aaaa) Fecha (dd/mm/aaaa) Fecha (dd/mm/aaaa) Fecha (dd/mm/aaaa)

% de Eliminación DQO, N

_T_T_T_T

y Py Py Py P

_T_T_T_T %elim DQO %elim NT %elim PT

Figura Figura Figura

Figura 191919---- Evolución del pH y la concentración de oxígeno en varios ciclos de operación de la planta 19 Evolución del pH y la concentración de oxígeno en varios ciclos de operación de la planta Evolución del pH y la concentración de oxígeno en varios ciclos de operación de la planta Evolución del pH y la concentración de oxígeno en varios ciclos de operación de la planta

Uno de los resultados interesantes y paro de la oxigenación

podemos observar a través de la caída del pH en los momentos en los que la air se encuentra funcionando. Tras estos

ha consumido, el licor mezcla se encuentra en anoxia desnitrificación, recuperando la alcalinidad perd (Figura 19)

Trabajando con TRC de 18 días,

mantenido alrededor de 1000 mg/l (Figura 20). El porcentaje de volatilidad se encuentra en valores de 73

volatilidad mayor al recibir un influente sinté

volátiles. Sin embargo, se ha mantenido siempre alrededor de los valores mencionados lo cual podría ser debido a: la formación de sales inorgánicas y precipitados, a la existencia de polifosfatos almacenados intracelul

bacterias PAO y en menor medida por por el elevado tiempo de retención celular.

Nitrificación

Evolución del pH y la concentración de oxígeno en varios ciclos de operación de la planta Evolución del pH y la concentración de oxígeno en varios ciclos de operación de la planta Evolución del pH y la concentración de oxígeno en varios ciclos de operación de la planta Evolución del pH y la concentración de oxígeno en varios ciclos de operación de la planta

piloto. piloto.piloto. piloto.

Uno de los resultados interesantes obtenidos es la relación de los ciclos de marcha de la oxigenación con el pH. La nitrificación consume alcalinidad, lo que podemos observar a través de la caída del pH en los momentos en los que la air

se encuentra funcionando. Tras estos periodos, cuando ya no se airea y el oxígeno se el licor mezcla se encuentra en anoxia, teniendo lugar

desnitrificación, recuperando la alcalinidad perdida y mostrando una subida de pH.

Trabajando con TRC de 18 días, los sólidos suspendidos volátiles (SSV) se han mantenido alrededor de 1000 mg/l (Figura 20). El porcentaje de volatilidad se encuentra en valores de 73-78 % si bien el licor mezcla se esperaba que tuviera una volatilidad mayor al recibir un influente sintético con menor cantidad de sólidos no volátiles. Sin embargo, se ha mantenido siempre alrededor de los valores mencionados lo cual podría ser debido a: la formación de sales inorgánicas y precipitados, a la existencia de polifosfatos almacenados intracelularmente por las bacterias PAO y en menor medida por la posible mineralización del fango causada por el elevado tiempo de retención celular.

Nitrificación Desnitrificación

ación de los ciclos de marcha a nitrificación consume alcalinidad, lo que podemos observar a través de la caída del pH en los momentos en los que la aireación s, cuando ya no se airea y el oxígeno se , teniendo lugar el proceso de ida y mostrando una subida de pH.

los sólidos suspendidos volátiles (SSV) se han mantenido alrededor de 1000 mg/l (Figura 20). El porcentaje de volatilidad se 78 % si bien el licor mezcla se esperaba que tuviera una tico con menor cantidad de sólidos no volátiles. Sin embargo, se ha mantenido siempre alrededor de los valores mencionados lo cual podría ser debido a: la formación de sales inorgánicas y armente por las la posible mineralización del fango causada

Figura

Figura Figura

Figura 20202020---- Evolución de los sólidos suspendidos volátiles del reactor biológicoEvolución de los sólidos suspendidos volátiles del reactor biológicoEvolución de los sólidos suspendidos volátiles del reactor biológicoEvolución de los sólidos suspendidos volátiles del reactor biológico

Los parámetros físico-químicos determinados durante el tiempo de experimentación nos dan información del estado real de la planta piloto, de su rendimiento de eliminación y de su evolución a lo largo del tiempo. En la Tabla 14 quedan recogidos los resultados analíticos de las caracterizaciones completas realizadas en la planta piloto. Del resto de parámetros determinados no mencionados anteriormente cabe destacar la baja turbidez del efluente marcada por la ausencia de flóculos en suspensión y una buena calidad del clarificado, así como valores de pH superiores a 7,5.

Tabla Tabla Tabla

Tabla 14141414---- Tabla Tabla Tabla reTabla reresumen caracterizaciones físicoresumen caracterizaciones físicosumen caracterizaciones físicosumen caracterizaciones físico----químicas de la planta pilotoquímicas de la planta pilotoquímicas de la planta pilotoquímicas de la planta piloto

30/08/1130/08/1130/08/1130/08/11 09/09/1109/09/11 09/09/1109/09/11 16/09/11 16/09/1116/09/1116/09/11 23/09/1123/09/1123/09/1123/09/11 27/09/1127/09/1127/09/1127/09/11 pH pH pH pH 7,73 7.74 7.92 7.66 7.71 Conductividad Conductividad Conductividad Conductividad (µS/cm)(µS/cm)(µS/cm)(µS/cm) 1190 1160 1160 1170 1160 Turbidez Turbidez Turbidez

Turbidez (NTU)(NTU)(NTU) (NTU) 1,56 1.21 1.90 2.13 2.16 DQO

DQO DQO

DQOENTENTENTENT (mg(mg(mg(mg DQODQO/l)DQODQO/l)/l)/l) 225 225 225 225 225

DQO DQO DQO

DQOSALSALSALSAL (mg(mg(mg(mg DQODQO/l)DQODQO/l)/l)/l) 12.40 12.00 14.10 16.80 11.60

%elim DQO %elim DQO %elim DQO %elim DQO 94.49 94.67 93.73 92.53 94.84 N N N

NTENTTENTTENTTENT (mg(mg(mg(mg NN/l)NN/l)/l)/l) 37.50 37.50 37.50 37.50 37.50

N N N

NTSALTSALTSAL TSAL(mg(mg N(mg(mgN/l)NN/l)/l) /l) 14.00 11.30 11.00 10.13 10.40

%elim N %elim N %elim N %elim NTTTT 62.67 69.87 70.67 72.99 72.27 NH NH NH

NH4444++++SAL SAL SAL SAL (mg N(mg N----NH(mg N(mg NNHNHNH4444++++/l)/l) /l)/l) 3,90 5,58 4,98 4.43 4,52

NO NO NO

NO333----SAL3SALSALSAL (mg(mg(mg(mg NNN----NONNONONO3333----/l)/l)/l)/l) 8,10 4,30 3,66 4.23 4,26

NO NO NO

NO222----SAL2SALSALSAL (mg(mg(mg(mg NNN----NONNONONO2222----/l)/l)/l)/l) 0,648 0,624 0,664 0.272 0,584

P P P

PTENTTENTTENTTENT (mg(mg(mg(mg PP/l)PP/l)/l)/l) 7.50 7.50 7.50 7.50 7.50

P P P

PTSALTSALTSAL TSAL(mg(mg P(mg(mgP/l)PP/l)/l) /l) 4.90 4.41 4.15 4.68 4.67

%elim PT %elim PT %elim PT %elim PT 34.67 41.20 44.67 37.60 37.73 PO PO PO

PO44443333----SALSALSAL SAL(mg(mg(mg(mg PPPP----POPOPOPO44443333----/l)/l)/l)/l) 4,65 4,22 3,83 4.35 4,57

60 6060 60 65 6565 65 70 7070 70 75 7575 75 80 8080 80 800 800 800 800 1000 10001000 1000 1200 12001200 1200 1400 14001400 1400 31/07/2011 31/07/201131/07/2011 31/07/2011 10/08/201110/08/201110/08/201110/08/2011 20/08/201120/08/201120/08/201120/08/2011 30/08/201130/08/201130/08/201130/08/2011 09/09/201109/09/201109/09/201109/09/2011 19/09/201119/09/201119/09/201119/09/2011 29/09/201129/09/201129/09/201129/09/2011 % V o lá ti l % V o lá ti l % V o lá ti l % V o lá ti l S S ( m g /l) Fecha FechaFecha Fecha

Sólidos Suspendidos Volátiles

Sólidos Suspendidos VolátilesSólidos Suspendidos Volátiles

4.2 4.2---- Resultados de la identificación y cuantificación de bacterias Resultados de la identificación y cuantificación de bacterias Resultados de la identificación y cuantificación de bacterias Resultados de la identificación y cuantificación de bacterias

nitrificantes mediante la técnica FISH.

Los resultados con la sonda EUBmix 338 han resultado positivos al hibridar un porcentaje muy alto de las células del flóculo y filamentosas (Figura 21B, 22B, 24B y 25B). Esto indicó que el área teñida con la sonda EUBmix 338 perteneciente al dominio Eubacteria representa un porcentaje muy alto sobre el total de bacterias presentes en la muestra.

4.2.1 4.2.14.2.1

4.2.1---- Bacterias amonioxidantesBacterias amonioxidantesBacterias amonioxidantesBacterias amonioxidantes (AOB)(AOB)(AOB) (AOB)

Con la técnica de hibridación

in situ

con sondas marcadas con fluorocromos (FISH) se han identificado comunidades bacterianas oxidantes de amonio a nitrito (amonioxidantes) muy desarrolladas, con las típicas formaciones de agregados celulares densos con forma esférica (Figura 21A y 22A).

- Sonda Nso1225: Amonioxidantes de la clase β-proteobacteria (

Nitrosomonas

)

En las figuras 21A y 22A se visualizó la hibridación de bacterias amonioxidantes de la clase β-proteobacteria del género

Nitrosomonas

(color rojo) mediante la sonda de hibridación Nso1225, mientras que las figuras 21B y 22B muestran una imagen del mismo campo en la que se utilizó la sonda EUBmix 338 para detectar bacterias pertenecientes al dominio Eubacteria(color verde).

Figura Figura Figura

Figura 21212121---- Fotos con las sondas Nso1225Fotos con las sondas Nso1225Fotos con las sondas Nso1225Fotos con las sondas Nso1225 amonioxidantesamonioxidantesamonioxidantesamonioxidantes de lade la clase de lade laclase clase βclase βββ----proteobacteriaproteobacteriaproteobacteria 600x (Figura proteobacteria600x (Figura 600x (Figura 600x (Figura 21A) y EUBmix 338 (Figura 21B

21A) y EUBmix 338 (Figura 21B21A) y EUBmix 338 (Figura 21B 21A) y EUBmix 338 (Figura 21B))))

Figura Figura Figura

Figura 22222222---- Fotos con las sondasFotos con las sondasFotos con las sondasFotos con las sondas Nso1225 Nso1225 Nso1225 Nso1225 amonioxidantesamonioxidantesamonioxidantesamonioxidantes de lade la clase de lade laclase clase βclase βββ----proteobacteriaproteobacteriaproteobacteriaproteobacteria 600x (Figura 600x (Figura 600x (Figura 600x (Figura 22A) y EUBmix 338 (Figura 22B

22A) y EUBmix 338 (Figura 22B22A) y EUBmix 338 (Figura 22B 22A) y EUBmix 338 (Figura 22B))))

Los resultados del análisis de imagen con las sondas Nso1225 (color rojo) y EUBmix 338 (color verde) muestran un porcentaje de hibridación de 4%±0.64%±0.64%±0.64%±0.6 de bacterias amonioxidantes de la clase β-proteobacteria (Figura 23).

Figura Figura Figura

Figura 23232323---- Porcentaje Hibridación AOBPorcentaje Hibridación AOBPorcentaje Hibridación AOB Porcentaje Hibridación AOB 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 % H Y B Campo % HYB Media

4.2.2 4.2.24.2.2

4.2.2---- Bacterias Bacterias Bacterias nitritoBacterias nitritonitritoxidannitritoxidantesxidanxidantestes (NOB)tes(NOB)(NOB) (NOB)

Con la técnica de Hibridación

in situ

con sondas marcadas con fluorocromos (FISH) se han identificado comunidades bacterianas oxidantes de nitrito a nitrato (nitritoxidantes) del género

Nitrospira

, con las típicas formaciones de agregados celulares densos con forma esférica (Figuras 24A y 25A, color rojo). No se han detectado agregados celulares del género

Nitrobacter

- Sonda Ntspa662 + competidora: Género

Nitrospira

(Sublinaje 1-IV) - Sonda NIT3 + competidora:

Nitrobacter sp.

En las figuras 24A y 25A se visualizó la hibridación de bacterias nitritoxidantes del género

Nitrospira

(color rojo) mediante la sonda de hibridación Ntspa662, mientras que en las figuras 24B y 24B muestran una imagen del mismo campo en la que se utilizó la sonda EUBmix 338 para detectar bacterias pertenecientes al dominio Eubacteria(color verde).

Figura Figura Figura

Figura 24242424---- Fotos con laFotos con laFotos con la sonda Ntspa662, Fotos con lasonda Ntspa662, sonda Ntspa662, sonda Ntspa662, nitritoxidantesnitritoxidantes flecha blancanitritoxidantesnitritoxidantesflecha blancaflecha blancaflecha blanca 600x 600x 600x 600x (Figura 24A) (Figura 24A) (Figura 24A) y (Figura 24A) y y y Eubacterias flecha blanca 600x

Eubacterias flecha blanca 600x Eubacterias flecha blanca 600x

Eubacterias flecha blanca 600x (Figura 2(Figura 2(Figura 2(Figura 24B) sondas EUBmix 3384B) sondas EUBmix 3384B) sondas EUBmix 3384B) sondas EUBmix 338, 600x, 600x, 600x , 600x

Figura Figura Figura

Figura 25252525---- Fotos con laFotos con laFotos con la sonda Ntspa662, Fotos con lasonda Ntspa662, sonda Ntspa662, sonda Ntspa662, nitritoxidantesnitritoxidantes flecha blancanitritoxidantesnitritoxidantesflecha blancaflecha blancaflecha blanca 600x 600x 600x 600x (Figura 25A) (Figura 25A) (Figura 25A) y (Figura 25A) y y y Eubacterias flecha blanca 600x

Eubacterias flecha blanca 600x Eubacterias flecha blanca 600x

Los resultados del análisis de imagen con las sondas Ntspa662 (color rojo) y EUBmix 338 (color verde) muestran un porcentaje de hibridación de 3%±1,03%±1,03%±1,03%±1,0 de bacterias nitritoxidantes del phylum

Nitrospira

Figura Figura Figura

Figura 26262626---- Porcentaje Hibridación NOBPorcentaje Hibridación NOBPorcentaje Hibridación NOB Porcentaje Hibridación NOB

Teniendo en cuenta los resultados obtenidos de los porcentajes de hibridación, se puede afirmar que existe una comunidad bacteriana de amonioxidantes (AOB) bien desarrollada con un porcentaje 4%±0.6 respecto del total de la comunidad de bacterias viables del fango activo. Se ha detectado la presencia de una comunidad bacteriana de nitritoxidantes del género

Nitrospira

, con un porcentaje del 3%±0,7, respecto del total de la comunidad de bacterias viables del fango activo.

0 2 4 6 8 10 12 14 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 % H Y B Campo % HYB Media

4.3 4.3---- Visualización al microscopio ópticoVisualización al microscopio ópticoVisualización al microscopio ópticoVisualización al microscopio óptico

4.3.1 4.3.14.3.1

4.3.1---- Bioindicación del fango activo.Bioindicación del fango activo.Bioindicación del fango activo.Bioindicación del fango activo.

En base a los parámetros físico-químicos obtenidos y la observación de la decantabilidad del fango en el reactor biológico, se observa una situación de buena depuración, con un buen clarificado presentando una turbidez baja y ausencia de flóculos en suspensión.

La observación tiene lugar con el microscopio óptico de contraste de fases con el objetivo 10x, el cual es el normalmente utilizado para las observaciones del flóculo.

Se presentan los macroflóculos de un tamaño medio, con una buena macroestructura del mismo y con un buen equilibrio entre bacterias formadoras de flóculo y bacterias filamentosas (Figura 27).

Figura Figura Figura

Figura 27272727---- Foto del flóculo de una muestra tomada el 09/09/11 de la planta piloFoto del flóculo de una muestra tomada el 09/09/11 de la planta piloFoto del flóculo de una muestra tomada el 09/09/11 de la planta piloFoto del flóculo de una muestra tomada el 09/09/11 de la planta piloto. Objetivo 10x to. Objetivo 10x to. Objetivo 10x to. Objetivo 10x

En cuanto a la microscopía del flóculo presenta formas irregulares, tamaño grande (> 500 µm) la mayor parte de ellos. Se trata de un fango maduro multinucleado, que presenta núcleos con pequeñas zonas anaerobias, el resto del flóculo aparece como grandes zonas aerobias, por lo que se observa que la oxigenación es buena, no hay deficiencia de oxígeno. Buenos ejemplos de la microscopía del flóculo son las Figuras 27 y 29, que cumplen estas características.

En el espacio interflocular se observa también un crecimiento de bacterias dispersas de pequeño tamaño y morfología cocobacilar.

En cuanto a la microbiota, en el examen microscópico se observan arcelas, indicadoras de una buena nitrificación.

Rotaria sp,

bioindicadoras de una buena aireación y una buena calidad del efluente.

La Figura 28 muestra un rotífero del género

Rotaria,

este organismo se alimenta a base de detritus y los parámetros bioindicadores asociados son una elevada edad del fango y una buena calidad del agua tratada.

Figura Figura Figura

Figura 282828---- 28 Foto de Foto de Foto de Foto de RotariaRotariaRotariaRotaria sp. de una muestra tomada el 30/08/11 de la planta piloto. Objetivo 10x sp. de una muestra tomada el 30/08/11 de la planta piloto. Objetivo 10x sp. de una muestra tomada el 30/08/11 de la planta piloto. Objetivo 10x sp. de una muestra tomada el 30/08/11 de la planta piloto. Objetivo 10x

En el examen microscópico se observa una población de bacterias filamentosas entre los que cabe destacar tipo 1851, tipo 1853, tipo 021N y Nostocoida.

La Figura 29 muestra un flóculo maduro, multinucleado, con la presencia de filamentos del tipo 1851 y en el que podemos observar la estabilidad en cuanto a tamaño y características del flóculo a lo largo de la experimentación.

Fi Fi Fi

Además se observan abundantes bacterias cocobacilares de tamaño medio

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