Chapter 3 Data Sharing in Multi-Threaded Applications and its Impact on
3.3 Analytical Model for Chip Performance
A continuación se presentan los resultados obtenidos en el cálculo de la concentración de fósforo en las muestras usando el método de la adición de estándar.
43
Tabla 3.9. Datos obtenidos para el método de adición de estándar
Réplicas Adiciones (mg/L) c (PO43-) en la muestra (mg/L) 2 4 6 10 Día 1 0,4455 0,5453 0,6640 0,8645 135,78 Día 2 0,4470 0,5453 0,6583 0,8667 135,21 Día 3 0,4467 0,5497 0,6583 0,8680 135,73 Día 4 0,4447 0,548 0,6577 0,8647 135,84 media 0,4460 0,547 0,6596 0,8660 135,64 varianza 1,16x10-6 4,65x10-6 8,77x10-6 2,82x10-6 0,0852 DE 0,0011 0,0022 0,0030 0,0017 0,2920 CV % 0,2410 0,3940 0,4489 0,1940 0,2152
Para cada uno de los días en que se analizó la concentración de fósforo en la muestra utilizando el método de adición de estándar se construye la curva correspondiente y se determina la concentración expresada en mg/L.
c = intercepto / pendiente
Fig 3.4. Curvas para el método de adición de estándar.
y = 0,0527x + 0,3399 R² = 0,999 y = 0,0528x + 0,3391 R² = 0,9996 y = 0,0528x + 0,3404 R² = 0,9999 y = 0,0526x + 0,3394 R² = 0,9999 0,200 0,300 0,400 0,500 0,600 0,700 0,800 0,900 1,000 0 2 4 6 8 10 12 A c (mg/L)
Adición de estándar
44
La concentración de Ptotal presente en la muestra de los EM se calculó por medio de la
ecuación obtenida de la curva de adición de estándar, teniendo en cuenta que hubo dilución de la muestra a lo largo del desarrollo del método la concentración de PO43-
45
Conclusiones
Se establecen las condiciones de trabajo adecuadas para el correcto desempeño del método espectrofotométrico del ácido vanadomolibdofosfórico propuesto para la determinación de fósforo total en productos de fermentación de microorganismos eficientes.
El proceso de validación demuestra que el método es lineal, preciso en términos de repetibilidad y reproducibilidad y veraz en el intervalo de concentraciones de 2,00 a 12,00 mg/L. Siendo el límite de detección 0,30 mg/L y el límite de cuantificación de 0,85 mg/L. Se demuestra que la contribución del efecto matriz no tiene influencias significativas en la determinación.
Se aplica el método propuesto a la muestra de microorganismos eficientes CBQ-VTC, lote: Investigación 200 L siendo la concentración de fósforo total determinada por el método de la curva de calibración y por el método de adición del estándar iguales a 136,10 ± 0,2045 mg/L y 135,64 ± 0,4642 mg/L respectivamente. No existiendo diferencias significativas entre las concentraciones calculadas por ambos métodos.
46
Recomendaciones
Aplicar el método espectrofotométrico del ácido vanadomolibdofosfórico propuesto para la determinación de fósforo total en otras muestras de microorganismos eficientes.
Bibliografía
1. ALA, A. C. (2007). MANUAL PARA LA PRODUCCIÓN DE COMPOST CON MICRORGANISMOS EFICACES.
2. APROLAB (2007). "Manual para la Producción de Compost con Microorganismos Eficaces". Perú.
3. Colectivo de autores (2013). Química analítica. Equilibrios Homogéneos. La Habana, Cuba.
4. Balan, T. L. and D. R. M. Maldonado (2007). "Uso de Microorganismos Eficientes (EM) en la alimentación de la Tilápia (oreochromis niloticus)". Costa Rica, Universidad EARTH. Licenciatura en Ciencias Agrícolas: 57.
5. Bernal, M. I. S. (2012). REMOCIÓN DE CONTAMINANTES DE AGUAS RESIDUALES POR RIZOBACTERIAS AUTÓCTONAS CON APLICACIÓN EN HUMEDALES ARTIFICIALES. FACULTAD DE BIOLOGÍA DEPARTAMENTO DE MICROBIOLOGÍA Y VIROLOGÍA. La Habana, Universidad de La Habana: 47.
6. BID (2009). "Manual Práctico de Uso de EM". [http://emuruguay.org/images/Manual_Practico_Uso_EM_OISCA_BID.pdf]. Uruguay.
7. Canetti, E. (2012). "Método de adiciones de estándar y recuperación."
8. Castellanos, J. C. V. (2008). "Validación del método analítico para la cuantificación de Bacitracina en el laboratório de control de calidad de una Industria farmacéutica veterinária". Bogotá, Colombia, Pontificia Universidad Javeriana Microbióloga Industrial: 151.
9. Cordell, D. (2010). "The Story of Phosphorus: Sustainability implications of global phosphorus scarcity for food security". Department of Water and Environmental Studies. Linköping, Linköping University. Doctoral: 240.
10. COVENIN (1993). "Norma Venezolana. Águas naturales, Industriales y residuales. Determinación de Fósforo". Venezuela: 32.
11. Earth-Ecuador, A. d. g. d. l. (Accedido en 2013). "Ficha Técnica EM 1."
12. Eco-Tecnologías (Accedido en 2013). "Tecnología EM - Microorganismos eficaces". Venezuela.
13. Harris, D. C. (2001). "Analisis Químico Cuantitativo". México, Grupo Editorial Iberoamérica.
14. Higa, T. (1991). "Effective microorganisms: a biotechnology for mankind". [First International Conference on Kyusei Nature Farming. Washington], USA,.
15. Higa, T. (1993). "An Earth Saving Revolution: A Means to Resolve Our World’s Problems Through Effective Microorganisms (EM)." en [ELSEIVER] 46: 230– 239.
16. Higa, T. (2003). ""Kyusei nature farming and environment al management through effective microorganisms—the past, present and future" " Elseiver 46: 230 - 239.
17. Higa, T. and J. F. Parr (1994). "Beneficial and Effective Microorganisms for a sustainable agriculture and environment". I. N. F. R. Center. Japan: 16.
18. Higa, T. and J. F. Parr (Accedido en 2013). "Manual de uso de EM, Microorganismos Benéficos y Eficaces para una agricultura y medio ambiente sostenible".
19. Higa, T. and J. F. Parr. (1995). "Beneficial and Effective Microorganisms in a Sustainable Agriculture and Environment. Technol.". [First International Conference on Kyusei Nature Farming], Khon Kaen University Khon Kaen, Thailand. October 17-21, 1989.
20. IDEAM (2006). ESTANDARIZACIÓN DE MÉTODOS ANALÍTICOS. M. y. E. A. Instituto de Hidrología. Colombia.
21. Instituto de Salud Publica (2010). "Validación de métodos y determinación de la incertitumbre de la medición: "Aspectos generales sobre la validación de métodos". Santiago. Guía Técnica nº 1: 70.
22. IUPAC (2014). "13th IUPAC INTERNATIONAL CONGRESS OF PESTICIDE CHEMISTRY in asociation with DIVISION OF AGROCHEMICALS." San Francisco, California.
23. Javaid., A. and R. Bajwa (2011). "Field evaluation of eff ective microorganisms (EM ) application for growth, nodulation, and nutrition of mung bean." Turk J Agric For 35: 443-452.
24. Lopes, A. R. C., et al. (2002). ""Fósforo"." Química Nova na Escola 15. 25. López, J. B. d. l. T. (2010). "Quimiometría I". Villa Clara, Cuba.
26. Martinez, C. S. P. and P. J. O. Toro (2010). "Espectroscopía". La Habana, Editorial Félix Varela.
27. Mayer, J., et al. (2010). ""How effective are ‘Effective microorganisms (EM)’? Results from a field study in temperate climate"." Applied Soil Ecology 46: 230 - 239.
28. ME-IIT-367 (2007). "Metodo para la determinación de fósforo". U. A. d. C. Juaréz. México.
29. Namsivayam, S. K. R., et al. (2011). ""Evaluation of Effective Microorganism (EM) for treatment of domestic sewage"." Journal of Experimental Sciences 2(7): 30-32
30. Nazaré, L. P. M. d. (2013). Propuesta de técnica analítica para la determinación del contenido de fósforo y sus derivados en productos de fermentación de Microorganismos Eficientes. Departamento de Licenciatura en Química, Universidad Central ¨Marta Abreu¨ de Las Villas, Cuba.: 68.
31. NC (2010). "Guía para la validación de métodos de ensaios químicos para alimentos" TS 368: 48.
32. NCh (2009). "Aguas residuales - Métodos de analisis - parte 15: determinación de fósforo total". Chile: 14.
33. Neto, O. D. P. (2006). "Determinação de Fósforo em Tónicos Fortificantes por Fotometria de Chama Usando um Titulador Fluxo-Batelada". Departamento de Qu+imica. Brasíl, Universidade Federal da Paraíba. Mestre.
34. NMX-AA-029-SCFI (2001). "Analisis de aguas - determinación de fósforo total en aguas naurales, residuales y residuales tratadas - método de prueba". S. d. E. DGN. México.
35. Oliveira, T. C. (2007). ""FÓSFORO: FUNÇÃO, METABOLISMO E RECOMENDAÇÕES"." NUTRIR GERAIS – Revista Digital de Nutrição 1. 36. Parra, L. J. P. R. (2013). Propuesta de técnicas analíticas para la determinación
del contenido de Nitrógeno en productos de fermentación de microorganismos eficientes. Departamento de Licenciatura en Química, Universidad Central ¨Marta Abreu¨ de Las Villas: 70.
37. Petrucci, R. H., et al. (2003). "Química General". Madrid, Pearson Educación. 38. Pública, Ministerio de Salud (Accedido en 2015). VALIDACIÓN DE MÉTODOS
ANALÍTICOS. www.cecmed.sld.cu: 30.
39. Regulación (2007). "VALIDACIÓN DE MÉTODOS ANALÍTICOS". Regulación nº 41. La Habana. Cuba. 47: 27.
40. Rodríguez, D. S. (2010). Validación de las técnicas analíticas y de los métodos de medida en el laboratorio para la cuantificación de dióxido de nitrógeno y ozono troposférico. Departamento de Licenciatura en Química. Cuba, UCLV ¨Marta Abreu¨: 97.
41. Rodriguez, G. N. and A. E. H. Monzon (1998). "Analisis Químico Cuantitativo". La Habana, Cuba, Editorial Félix Varela.
42. Rodriguez, G. V. (2011). "Criterios para la validación de métodos fisicoquímicos" S. d. Salud. CCAYAC-P.058: 20.
43. Salazar, A. F. S. (2011). "Validación de las Técnicas Hierro Total y Fosfatos en Agua en el Laboratório Aliscca LTDA". Quimica Industrial. Pereira, Colombia, Universidad Tecnológica de Pereira. Doctor: 91.
44. Skoog, D. A., et al. (2001). "Principios de Análisis Instrumental". Madrid, Concepción Fernández Madrid.
45. Standard, M. (2005). "Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater 20th Edition", American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment Federation.
46. Szymanski, N. and R. A. Patterson (2003). Effective Microorganisms (EM) and Wastewater Systems. "Future Directions for On-site Systems: Best Management Practice Proceedings of On-site 03 Conference", University of New England, Armidale, Lanfax Laboratories Armidale.
47. Tovar, S. A. O. and E. C. Erazo (2009). Analisis de las Caracteristicas Fisico- quimicas de Aguas y Suelos de Cultivos Acuicolas Intensivos y Superintensivos. Colombia.
48. Valdiviezo, Y. d. L. S. (2008). "Evaluación del Potencial Forrajero del Bromus Sitchensis con diferentes niveles de Azufre y Fósforo". Escuela de Ingeniería Zootécnica. Equador, Escuela Superior Politécnica de Chimborazo Ingeniero Zootecnista: 92.
49. Yépez, A. S., et al. (2002). "Guia prática para el uso de EM en la Producción Animal Sostenible". Costa Rica.
50. Zagal, E. and A. Sadzawka (2007). "Implementación del sistema para la validación de los métodos de análisis y mediciones de laboratorio en suelos y lodos". Chile, Universidad de Concepción Facultad de de Agronomía Chillán: 22.
Anexos
Anexo 1. Bloc digest 6 plazas (equipo utilizado para la digestión de la muestra)
Anexo 3. Datos para la confección del gráfico, espectro de absorción para la solución patrón de 5 mg/L. λ (nm) A Promedio de A I II III 400 0,396 0,402 0,411 0,403 405 0,353 0,357 0,367 0,359 410 0,313 0,315 0,325 0,318 415 0,278 0,279 0,287 0,281 420 0,246 0,247 0,254 0,249 425 0,218 0,218 0,225 0,220 430 0,194 0,194 0,20 0,196 435 0,172 0,173 0,178 0,174 440 0,155 0,155 0,160 0,157 445 0,140 0,138 0,144 0,141 450 0,126 0,126 0,131 0,128 455 0,115 0,115 0,118 0,116 λ (nm) A Promedio de A I II III 460 0,104 0,103 0,107 0,105 465 0,094 0,094 0,096 0,095 470 0,084 0,082 0,085 0,084 475 0,073 0,076 0,075 0,075 480 0,062 0,062 0,065 0,063 485 0,052 0,052 0,055 0,053 490 0,043 0,043 0,045 0,044 500 0,027 0,027 0,028 0,027 550 0,001 0,002 0,004 0,002 600 0,001 0,003 0,001 0,002 650 0,004 0,001 0,004 0,003
Anexo 4. Datos para la confección del gráfico, espectro de absorción para la solución patrón de 12 mg/L. λ (nm) A Promedio de A I II III 400 0,970 0,988 0,940 0,966 405 0,870 0,880 0,838 0,863 410 0,774 0,775 0,748 0,766 415 0,682 0,691 0,665 0,679 420 0,605 0,612 0,588 0,602 425 0,540 0,545 0,520 0,535 430 0,478 0,483 0,465 0,475 435 0,428 0,434 0,413 0,425 440 0,383 0,390 0,372 0,382 445 0,346 0,352 0,336 0,345 450 0,314 0,319 0,305 0,313 455 0,285 0,290 0,279 0,285 λ (nm) A Promedio de A I II III 460 0,258 0,262 0,255 0,258 465 0,232 0,236 0,225 0,231 470 0,207 0,211 0,201 0,206 475 0,182 0,185 0,177 0,181 480 0,157 0,160 0,153 0,157 485 0,132 0,135 0,128 0,132 490 0,109 0,112 0,106 0,109 500 0,069 0,073 0,068 0,070 550 0,001 0,004 0,002 0,002 600 0,000 0,003 0,001 0,001 650 0,001 0,008 0,002 0,004
Anexo 5. Diagrama de flujo para la determinación de PTotal: Dige s tión á c ida Tomar 50 mL de muestra en un block de digestión Añadir 5 mL de HNO3(conc) y
1 mL de H2SO4(conc)
Digestar por 30 minutos a 150ºC
Enfriar
Añadir 0.1 mL (2 gotas) de fenolftaleína
Neutralizar con NaOH 10 mol/L hasta que aparezca el
color rosa Trasvasar a un matraz de 100 mL, enfriar a temperatura ambiente y enrasar E li mina c ión de c olor Tomar 100 mL y añadir 4 g de carbón activado Agitar durante 5 minutos Filtrar a vacío y lavar bien el
filtrado
(Si fuera necesario filtrar más de una vez pudiera usarse la filtración a
gravedad)
Trasvasar a un matraz de 2 L todo el contenido inicial de la
muestra ya decolorada
Tomar 500 mL de muestra y diluir a 1000 mL en un matraz volumétrico Des a rrol la dor de c ol or Medir 10 mL y llevar a un matraz de 25 mL Preparar paralelamente Añadir 5 mL de la solución vanadato-molibdato (reactivo desarrollador de color) Enrasar y dejar desarrollar
color durante 10 minutos
Ajustar espectrofotómetro con el blanco de reactivos a la
longitud de onda seleccionada (420 nm)