• No results found

B Characterization of Reference Point Distribution and De mand

Al día 0 los grupos E+ y E- no presentaban diferencias significativas (58 y 62 ng/ml respectivamente; p>0,10). El descenso de la PRL sérica ha sido asociado y usado como un indicador del consumo de ergoalcaloides (Paterson et al., 1995; Emile et al., 2000; Burke y Rorie 2002; Eisemann et al., 2014), reflejándose en el presente trabajo la diferencia de PRL (p<0,05) entre los grupos E+ y E- a partir del día 13 y se mantuvieron hasta finalizar el ensayo.

Los niveles de PRL del grupo E+ al día 13 descendieron significativamente (8 ng/ml) y se mantuvieron sin diferencias (3ng/ml) hasta el día 145. Por el contrario, en el grupo E-, la caída recién se observa el día 96 (30 ng/ml; p<0,05) hasta el día 145, que podría ser atribuible al fotoperiodo, como se expresa en el trabajo de Parish et al., (2012), con valores séricos de PRL 5 veces inferiores en el otoño que en la primavera. Ambos resultados concuerdan con concuerdan con los obtenidos por Pratt et al., (2015).

37 6.3 Efecto del consumo de festuca E+ sobre la frecuencia

respiratoria

El promedio de las frecuencias respiratorias del grupo E+ fue mayor (p<0,05) que el de grupo E-, indicando que los animales aumentan la FR por consumo de festuca E+, al igual que el trabajo de Burke et al., (2001) y Eisemann et al., (2014). Este efecto se puede ver en la figura 10, este animal evidenció un aumento de la FR y de la salivación luego de un breve arreo a la parcela. En contraposición, el Grupo E- no se vio afectado por realizar dicho recorrido.

A su vez al relacionar los grupos en E+ y E- existieron diferencias (p<0,05) los días 55 y 96 con temperaturas medias ambientales de 25,4 y 22,2 C° respectivamente, Y si bien el día 81 hubo una Ta de 24,6 C° no hubo diferencias significativas, lo cual podría ser atribuido a que las mediciones se iniciaron a las 7.30 am y generalmente, en ese horario las diferencias son menores entre grupos según el trabajo de Eisemann et al., (2014). Si se hubiese evaluado la FR durante el periodo de mayor temperatura del día, tal vez hubiesen aumente la cantidad de días con diferencias entre sí.

En el trabajo de Schmidt y Osborn, (1993), demostraron que a 21 C° la FR no se vio modificada sin embargo a 31 C° existieron diferencias significativamente.

6.4 Efecto del consumo de festuca E+ sobre la temperatura rectal Se observó que los animales que consumieron festuca E- mantuvieron estable la TR a lo largo de todo el ensayo independientemente de la temperatura ambiental y los que estuvieron consumiendo la festuca E+ presentaron variaciones significativas en la TR entre las diferentes fechas de medición (p<0,05), resultados similares obtuvieron Hannah et al., (1990); Burke y Rorie, (2002); Eisemann et al., (2014).

En los meses de noviembre y diciembre, no hubo diferencias entre grupos, siendo recién en enero y febrero, días 55 y 96, el aumento de la Ta a 25,4 y 22,2 C° respectivamente, que evidenciaron diferencia (p<0,05) entre grupos. En marzo, día 81, si bien hubo una Ta de 24,6 C°, que podría tomarse las mismas consideraciones por el horario que en punto (6.3). Finalmente en el

38

mes de abril, día 145, que con solo 18 C° de Ta presentaron una diferencia (p<0,05) con el grupo E-, lo cual podría ser el reflejó de la cronicidad del efecto de los ergoalcaloides sobre la vasoconstricción sostenida en el tiempo como se expresó en el punto (2.3.4.4).

6.5 Riesgo de ocurrencia del síndrome distérmico

El animal bajo estrés térmico, es aquel sometido a un ambiente de elevada temperatura ambiental que para disipar el calor corporal aumenta la FR, aumenta el consumo de agua, busca sombra y a medida que las condiciones estresantes son más severas comienza a observarse en primer lugar el jadeo, luego salivación excesiva, distrés respiratorio y finalmente la protrusión de la lengua. A partir del momento que este mismo animal se ve imposibilitado de regular la temperatura corporal y se eleva por encima de los 40 C° comienza a ser clasificado como síndrome distérmico.

En este trabajo los animales que consumían festuca E+ presentaron un riesgo de ocurrencia de SD 11,8 veces mayor que el de los animales consumiendo Festuca E- (OR=11,8; IC95%=3,9-36,0; P<0,05). Además se estimó que por cada grado centígrado que aumentaba la temperatura media diaria, el riesgo de SD aumentaba 1,3 veces (OR=1,3; IC95%=1,1-1,5; P<0,05).

6.6 Efecto del consumo de festuca E+ sobre la ganancia de peso La GPV en los 145 días del ensayo fue de 480 g/d en el grupo E+ y de 100 g/d para el grupo E+. Resultados similares obtuvieron Realini et al., (2005) en un ensayo durante la primavera durante 102 días, donde se observa un ADPV de 120g/d para E+ y de 620 g/d para E-.

La diferencia (p<0,05) fue de 380 g/d lo cual condice con lo establecido en el punto (3.3.1), por lo tanto se establece que hubo una disminución de la GPV 79 % por consumo de Festuca E+.

39

7 Conclusión

Se concluye que el consumo de festuca E+ en la cuenca del salado durante el periodo primavero-estival, reduce un 79% la ganancia de peso vivo y aumenta la temperatura corporal, la frecuencia respiratoria y la posibilidad de generar el síndrome distérmico en 11,8 veces.

Los valores séricos de cobre si bien presentaron diferencias (p<0,05) en el grupo E+, no hubo diferencias entre grupos talvez asociado a que el grupo E- presentó valores iniciales bajos, por lo que serían necesarios nuevos estudios que lo evalúen.

40

8 Bibliografía

Aldrich, C.G.; Paterson, J.A.; Tate, J.L.; & Kerley, M.S. (1993). The Effects of Endophyte-Infected Tall Fescue Consumption on Diet Utilization and Thermal Regulation in Cattle. J. Anim. Sci. 71(1): 164–170.

Ayers, A.W.; Hill, N.S.; Rottinghaus, G E Stuedemann, J.A.; Thompson, F.N.; Purinton, P.T.; Seman, D.H.; Dawe, D.L.; Parks, A.H.; & Ensley, D. (2009). Ruminal Metabolism and Transport of Tall Fescue Ergot Alkaloids. Crop Sci. 49(10): 2309–2316.

Bacon, C.W.; Porter, J.K.; Robbins, J.D.; & Luttrell, E.S. (1977). Epichloë typhina from toxic tall fescue grasses. Appl. Environ. Microbiol. 34(5): 576–81. Badia, A.; Moron, A.; Cuffi, L.; & Vila, E. (1988). Effects of ergotamine on

cardiovascular catecholamine receptors in the pithed rat. Gen. Pharmac. 19(3): 475–481.

De Battista, J.P. (1989). El Endófito de la Festuca. Rev. Arg. Prod. Anim. 9(6): 447–456.

Bond, J.; Powell, J.B.; Undersander, D.J.; Moe, P.W.; Oltjen, R.R.; Moe, P.W.; Tyrrell, H.F.; & Oltjen, R.R. (1984). Forage Composition and Growth and

Physiological Characteristics of Cattle Grazing Several Varieties of Tall Fescue During Summer Conditions. J. Anim. Sci. 59(3): 584–593.

Borrajo, C.I. (1998). Implantación de cultivares de festuca en la Cuenca del Salado, INTA.

Burke, J.M.; Spiers, D.E.; Kojima, F.N.; Perry, G. a; Salfen, B.E.; Wood, S.L.; Patterson, D.J.; Smith, M.F.; Lucy, M.C.; Jackson, W.G.; & Piper, E.L. (2001). Interaction of endophyte-infected fescue and heat stress on ovarian function in the beef heifer. Biology of reproduction 65(1): 260–268.

Burke, J.M. & Rorie, R.W. (2002). Changes in ovarian function in mature beef cows grazing endophyte infected tall fescue. Theriogenology 57(6): 1733–1742. Burns, M.G. (2012). Timing of exposure to toxic tall Fescue: effects on beff cattle reproduction [PhD. Thesis]. Clemson. Clemson University. .

Bush, L.P.; Wilkinson, H.H.; & Schardl, C.L. (1997). Bioprotective Alkaloids of Grass-Fungal Endophyte Symbioses. Plant. physiol. 114(1): 1–7.

Campero, C.M. (1996). Efectos de la festuca tóxica sobre el desempeño reproductivo y producción en bovinos. Therios 25(132): 306–316.

41

Cangiano, C.A. & Brizuela, M.A. (2011). Especies forrajeras cultivadas en Argentina. 2da Ed. En: Producción Animal en Pastoreo. INTA. Buenos Aires, Argentina, pp. 42–43.

Carrillo, J. (2003). Gramíneas y leguminosas. 2da Ed. En: Manejo de pasturas. INTA. Balcarce, pp. 61–111.

Clay, K. & Schardl, C. (2002). Evolutionary origins and ecological

consequences of endophyte symbiosis with grasses. Am. Nat. 160(4): 99–127. Corrigan, A.M. (2005). Ruminal Responses in Cattle Grazing Tall Fescue Pastures Differing in Endophyte Level [MSc. Thesis]. Knoxville. The University of Tennesse. .

Crawford, R.J.; Forwood, J.R.; Belyea, R.L.; & Garner, G.B. (1989).

Relationship between Level of Endophyte Infection and Cattle Gains on Tall Fescue. J. Prod. Agric. 2(2): 147–151.

Dennis, S.B.; Allen, V.G.; Saker, K.E.; Fontenot, J.P.; Ayad, J.Y.; Brown, C.P.; Dennis, S.B.; Allen, V.G.; Saker, K.E.; & Fontenot, J.P. (1998). Influence of Neotyphodium coenophialum on copper concentration in tall fescue . J. Anim. Sci. 76(10): 2687–2693.

Duckett, S.K.; Andrae, J.G.; & Pratt, S.L. (2014). Exposure to ergot alkaloids during gestation reduces fetal growth in sheep. Front. Chem. 2(68): 1–7. Eisemann, J.H.; Huntington, G.B.; Williamson, M.; Hanna, M.; & Poore, M. (2014). Physiological responses to known intake of ergot alkaloids by steers at environmental temperatures within or greater than their thermoneutral zone. Front. Chem. 2(96): 1–9.

Emile, J.C.; Bony, S.; & Ghesquie, M. (2000). Influence of consumption of endophyte-infested tall fescue hay on performance of heifers and lambs. J. Anim. Sci. 78(2): 358–364.

Evans, T.; Blodgett, D.; & Rottinghaus, G. (2012). Fescue toxicosis. En: Ramesh, C. G. Veterinary Toxicology. Elsevier, pp. 1166–1177.

Fazzio, L.E.; Mattioli, G.A.; Picco, S.J.; Relling, A.E.; & Rosa, D.E. (2013). Nutricion Mineral y Vitamínica de los bovinos Mattioli, G. A., La Plata.

Fioriti, F. (2008). Erradicación de festuca infectada con Neotyphodium coenophialum en base a la determinación de porcentaje de infestación y abundancia de festuca en la mezcla forrajera [Monografia de Especialidad]. INTA, Balcatce. .

Firth, D. (1993). Bias reduction of maximum likelihood estimates. Biometrika 80: 27–38.

42

Gallagher, R.G. & Senger, P.L. (1989). Effect of Phenylephrine , Ergonovine , Oxytocin and Norepinephrine as an Extender Ingredient on Viability of Bovine Spermatozoa. J. Anim. Sci. 67(6): 1573–1576.

Glenn, E.; Bacon, C.W.; Price, R.; & Hanlin, R.T. (1996). Molecular Phylogeny of Acremonium and Its Taxonomic Implications. Mycol. Soc. Am. 88(3): 369– 383.

Hannah, S.M.; Paterson, J.A.; Williams, J.E.; & Kerley, M.S. (1990). Effects of increasing dietary levels of endophyte-infected tall fescue seed on diet

digestibility and ruminal kinetics in sheep . J. Anim. Sci. 68(6): 1693–1701. Iannone, L.J.; White, J.F.; Giussani, L.M.; Cabral, D.; & Novas, M. V (2010). Diversity and distribution of Neotyphodium-infected grasses in Argentina. Mycol. Progress 10: 9–19.

Jones, K.L.; King, S.S.; Griswold, K.E.; Cazac, D.; Cross, D.L.; Jones, K.L.; King, S.S.; Griswold, K.E.; Cazac, D.; & Cross, D.L. (2003). Domperidone can ameliorate deleterious reproductive effects and reduced weight gain associated with fescue toxicosis in heifers. J. Anim. Sci. 81(10): 2568–2574.

Jones, H.L.; King, S.S.; & Iqbal, M.J. (2004). Endophyte-Infected Tall Fescue Diet Alters Gene Expression in Heifer Luteal Tissue as Revealed by

Interspecies Microarray Analysis. Mol. Reprod. Dev. 67(2): 154–161.

Kim, J.H.; Kim, C.W.; Ahn, G.C.; Park, E.K.; Kim, C.M.; & Park, K.K. (2007). Ergovaline levels in tall fescue and its effect on performance of lactating cows. Anim. Feed. Sci. Tech. 136(3-4): 330–337.

Klotz, J.L.; Bush, L.P.; Smith, D.L.; Shafer, W.D.; Smith, L.L.; Vevoda, A.C.; Craig, A.M.; Arrington, B.C.; Strickland, J.R.; Klotz, J.L.; Bush, L.P.; Smith, D.L.; Shafer, W.D.; Smith, L.L.; Vevoda, A.C.; Craig, A.M.; Arrington, B.C.; &

Strickland, J.R. (2006). Assessment of vasoconstrictive potential of d-lysergic acid using an isolated bovine lateral saphenous vein bioassay. J. Anim. Sci. 84(11): 3167–3175.

Klotz, J.L.; Bush, L.P.; Smith, D.L.; Shafer, W.D.; Smith, L.L.; Arrington, B.C.; Klotz, J.L.; Bush, L.P.; Smith, D.L.; Shafer, W.D.; Smith, L.L.; Arrington, B.C.; & Strickland, J.R. (2007). Ergovaline-induced vasoconstriction in an isolated bovine lateral saphenous vein bioassay. J. Anim. Sci. 85(9): 2330–2336. Klotz, J.L.; Kirch, B.H.; Aiken, G.E.; Bush, L.P.; & Strickland, J.R. (2010). Contractile response of fescue-naïve bovine lateral saphenous veins to

increasing concentrations of tall fescue alkaloids. J. Anim. Sci. 88(1): 408–415. Klotz, J. (2015). Activities and Effects of Ergot Alkaloids on Livestock

Physiology and Production. Toxins. 7(8): 2801–2821.

Kosmidis, I. & Firth, D. (2009). Bias reduction in exponential family nonlinear models. Biometrika 96: 793–804.

43

Koulman, A.; Lane, G.; Christensen, M.J.; Fraser, K.; & Tapper, B.A. (2007). Peramine and other fungal alkaloids are exuded in the guttation fluid of endophyte-infected grasses. Phytochemistry 68(3): 355–360.

Leuchtmann, A.; Bacon, C.W.; Schardl, C.L.; White, J.F.; & Tadych, M. (2014). Nomenclatural realignment of Neotyphodium species with genus Epicholë. Mycol. Soc. Am. 106(2): 202–15.

Littell, R.C.; Henry, P.R.; & Ammerman, C.B. (1998). Statistical analysys of repeted measures using SAS procedures. J. Anim. Sci. 76(4): 1216–1231. Looper, M.L.; Edrington, T.S.; Flores, R.; Burke, J.M.; Callaway, T.R.; Aiken, G.E.; Schrick, F.N.; & Rosenkrans, C.F. (2007). Influence of dietary endophyte (Neotyphodium coenophialum)-infected tall fescue (Festuca arundinacea) seed on fecal shedding of antibiotic resistance-selected Escherichia coli O157:H7 in ewes. J. Anim. Sci. 85(4): 1102–1108.

Looper, M.L.; Rorie, R.W.; Person, C.N.; Lester, T.D.; Hallford, D.M.; Aiken, G.E.; Roberts, C.A.; Rottinghaus, G.E.; & Rosenkrans, C.F. (2008). Influence of toxic endophyte-infected fescue on sperm characteristics and endocrine factors of yearling Brahman-influenced bulls. J. Anim. Sci. 87(3): 1184–1191.

Maddaloni, J. & Ferrari, L. (2001). Festuca alta. En: Forrajeras y pasturas del ecosistema templado húmedo de la Argentina. INTA - Universidad Nacional de Lomas de Zamora, Facultad de Ciencias Agrarias, pp. 165–182.

Malinowski, D.P.; Zuo, H.; Belesky, D.P.; & Alloush, G.A. (2004). Evidence for copper binding by extracellular root exudates of tall fescue but not perennial ryegrass infected with Neotyphodium spp . endophytes. Plant Soil 267(1): 1–12. Mazzanti, A.; Castaño, J.; Sevilla, G.H.; & Orbea, J.R. (1992). Gramíneas forrajeras, CERBAS – INTA.

Mc Murphy, W.E.; Lusby, K.S.; Smith, S.C.; Muntz, S.H.; & Strasia, C.A. (1990). Steer performance on tall fescue pasture. J. Prod. Agric. 3(1): 100–102.

Mcleay, L.M. & Smith, B.L. (2006). Effects of ergotamine and ergovaline on the electromyographic activity of smooth muscle of the reticulum and rumen of sheep. Am. J. Vet. Res. 67(4): 707–714.

Mcpherson, G.A. & Beart, P.M. (1983). The selectivity of some ergot derivatives for α1 and α 2-adrenoceptors of rat cerebral cortex. Eur. J. Pharmacol. 91: 363– 369.

Milne, G.D. (2009). Management in New Zealand, Australia, and South

America. En: Tall Fescue for the Twenty-first Century; Fribourg, H A Hannaway, D B West, C P. Madison (EE UU), pp. 101–120.

44

Morgan-Jones, G. & Gams, W. (1982). An endophyte of Festuca arundinacea and the anamorph of Epichloe typhina, new taxa in one of two new sections of Acremonium. Mycol. Soc. Am. 15: 311–318.

Odriozola, E.R. & Pagate Iraguen, I. (1999). Respuesta de los animales de razas Británicas y cruza con Brahman pastoreando festuca tóxica, ante la aplicación de Zeranole [Monografia de Especialidad]. INTA, Balcarce. .

Oliver, J.W.; Schultze, A.E.; Rohrbach, B.W.; Fribourg, H.A.; Ingle, T.; Waller, J.C.; Oliver, J.W.; Schultze, A.E.; Rohrbach, B.W.; Fribourg, H.A.; Ingle, T.; & Waller, J.C. (2000). Alterations in hemograms and serum biochemical analytes of steers after prolonged consumption of endophyte-infected tall fescue . J. Anim. Sci. 78(4): 1029–1035.

Omacini, M.; Gundel, P.E.; & Semmartin, M. (2013). Huellas de la simbiosis pasto-endofito en el agroecosistema. En: García de Salamone, I. E., S. Vázquez, C. Penna, & F. Cassán Rizosfera, biodiversidad y agricultura sustentable. Ciudad Autónoma de Buenos Aires, pp. 73–88.

Panaccione, D.G. (2005). Origins and significance of ergot alkaloid diversity in fungi. Fems. Microbiol. Lett. 251(1): 9–17.

Parish, J.A.; Parish, J.R.; Best, T.F.; Boland, H.T.; & Young, C.A. (2012). Effects of selected endophyte and tall fescue cultivar combinations on steer grazing performance , indicators of fescue toxicosis, feedlot performance, and carcass traits. J. Anim. Sci. 91(1): 342–355.

Paterson, J.; Forcherio, C.; Larson, B.; Samford, M.; & Kerley, M. (1995). The effects of fescue toxicosis on beef-cattle productivity. J. Anim. Sci. 73(3): 889– 898.

Peters, C.W.; Grigsby, K.N.; Aldrich, C.G.; Paterson, J.A.; Lipsey, R.J.; Kerley, M.S.; & Garner, G.B. (1992). Performance, Forage Utilization, and Ergovaline Consumption by Beef Cows Grazing Endophyte Fungus-Infected Tall Fescue, Endophyte Fungus-Free Tall Fescue, or Orchardgrass Pastures. J. Anim. Sci. 70(5): 1550–1561.

Porter, J.K. (1995). Analysis of endophyte toxins: fescue and other grasses toxic to livestock. J. Anim. Sci. 73(3): 871–880.

Porter, J.K. & Thompson, F.N. (1992). Effects of fescue toxicosis on reproduction in livestock. J. Anim. Sci. 70(5): 1594–1603.

Pratt, S.L.; Stowe, H.M.; Whitlock, B.K.; Strickland, L.; Miller, M.; Calcatera, S.; Dimmick, M.D.; Aiken, G.E.; Schrick, F.N.; Long, N.M.; Duckett, S.K.; & Andrae, J.G. (2015). Bulls grazing Kentucky 31 tall fescue exhibit impaired growth, semen quality, and decreased semen freezing potential. Theriogenology 83(3): 408–414.

45

Realini, C.E.; Duckett, S.K.; Hill, N.S.; Hoveland, C.S.; Lyon, B.G.; Sackmann, J.R.; & Gillis, M.H. (2005). Effect of endophyte type on carcass traits , meat quality , and fatty acid composition of beef cattle grazing tall fescue. J. Anim. Sci. 83(2): 430–439.

Riet Correa, F. (1993). Intoxicação por Claviceps purpurea. En: Riet Correa, F., M. C. Méndez, & A. L. Schild Intoxicações por plantas e micotoxicoses em animais domésticos. Hemisfério Sul do Brasil. Pelotas (Brasil), pp. 227–239. Rudgers, J. & Clay, K. (2007). Community and ecosystem consequences of endophyte symbiosis with tall fescue. En: Proc: New Zealand Grassland Association: Endophyte Symposium. pp. 19–35.

Rumsey, T.S.; Stuedemann, J.A.; Wilkinson, S.R.; & Williams, D.J. (1979). Chemical Composition of Necrotic Fat Lesions in Beef Cows Grazing Fertilized Kentucky-31 Tall Fescue T . J. Anim. Sci. 48(3): 673–682.

Saker, K.E.; Allen, V.G.; Kalnitsky, J.; Thatcher, C.D.; Swecker, W.S.; &

Fontenot, J.P. (1998). Monocyte Immune Cell Response and Copper Status in Beef Steers That Grazed Endophyte-Infected Tall Fescue. J. Anim. Sci. 76(10): 2694–2700.

SAS Institute Inc. (2010a). Chapter 51. The LOGISTIC Procedure. En:

SAS/STAT® 9.22 User’s Guide. SAS® Publishing. Cary, North Carolina (USA), pp. 3861–4100.

SAS Institute Inc. (2010b). Chapter 56. The MIXED Procedure. En: SAS/STAT® 9.22 User’s Guide. SAS® Publishing. Cary, North Carolina (USA), pp. 4513– 4718.

SAS Institute Inc. (2010c). Chapter 92. The TTEST Procedure. En: SAS/STAT® 9.22 User’s Guide. SAS® Publishing. Cary, North Carolina (USA)., pp. 7380– 7447.

Schmidt, S.P.; Hoveland, C.S.; Clark, E.M.; Norman, D.; Smith, L.A.; Grimes, H.W.; & Holliman, J.L. (1982). Association of an Endophytic Fungus with Fescue Toxicity in Steers Fed Kentucky 31 Tall Fescue Seed or Hay. J. Anim. Sci. 55(6): 1259–1263.

Schmidt, S.P. & Osborn, T.G. (1993). Effects of endophyte-infected tall fescue on animal performance. Agr. Ecosyst. Environ. 44(1-4): 233–262.

Schrick, F.N.; Schuenemann, G.M.; Waller, J.C.; Hopkins, F.M.; & Edwards, J.L. (2005). [Internet]. Fertility of Beef Cattle Grazing Endophyte-infected Tall Fescue Pastures(1): 257–263. Disponible en:

http://beefrepro.unl.edu/proceedings/2006stjoe/16_stjoe_fescue_schrick.pdf.

Schuenemann, G.M.; Edwards, J.L.; Davis, M.D.; Blackmon, H.E.; Scenna, F.N.; Rohrbach, N.R.; Saxton, A.M.; Adair, H.S.; Hopkins, F.M.; Waller, J.C.; &

46

Schrick, F.N. (2005a). Effects of administration of ergotamine tartrate on fertility of yearling beef bulls. Theriogenology 63(5): 1407–1418.

Schuenemann, G.M.; Hockett, M.E.; Edwars, L.J.; Rohrbach, N.R.; & Schrick, N.F. (2005b). Embryo development and survival in beef cattle administered ergotamine tartrate to simulate fescue toxicosis. Reprod. Biol. 5(2): 137–150. Schumann, B.; Danicke, S.; Meyer, U.; Ueberscha, K.; & Breves, G. (2007). Effects of different levels of ergot in concentrates on the growing and

slaughtering performance of bulls and on carry-over into edible tissue. Arch. Anim. Nutr. 61(5): 357–370.

Schumann, B.; Lebzien, P.; Ueberschär, K.; & Dänicke, S. (2009). Effects of the level of feed intake and ergot contaminated concentrate on ergot alkaloid

metabolism and carry over into milk. Mol. Nutr. Food Res. 53(7): 931–938. Spiering, M.J.; Davies, E.; Tapper, B.A.; Schmid, J.; & Lane, G.A. (2002). Simplified extraction of ergovaline and peramine for analysis of tissue distribution in endophyte-infected grass tillers. J. Agr. Food Chem. 50(21): 5856–62.

Spiers, D.E.; Rottinghaus, G.E.; Garner, G.B.; Ellersieck, M.R.; Spiers, D.E.; Rottinghaus, G.E.; Garner, G.B.; & Ellersieck, M.R. (2001). Thermoregulatory ability of beef heifers following intake of endophyte-infected tall fescue during controlled heat challenge . J. Anim. Sci. 79(7): 1780–1788.

Stewart, R.L.; Scaglia, G.; Abaye, O.A.; Swecker Jr, W.S.; Wong, E.A.; Mccann, M.; & Fontenot, J.P. (2010). Tall Fescue Copper and Copper- Zinc Superoxide Dismutase Status in Beef Steers Grazing Three Different Fescue Types. The Professional Animal Scientist 26: 489–497.

Strickland, J.R.; Looper, M.L.; Matthews, J.C.; Rosenkrans, C.F.; Flythe, M.D.; & Brown, R. (2011). St. Anthony’s Fire in livestock: Causes, mechanisms, and potential solutions. J. Anim. Sci. 89(5): 1603–1626.

Stuedemann, J.A.; Hill, N.S.; Thompson, F.N.; Fayrer-Hosken, R.A.; Hay, W.P.; Dawe, D.L.; Seman, D.H.; & Martin, S.A. (1998). Urinary and Biliary excretion of ergot alkaloids from steers that grazed endophyte-infected tall fescue. J. Anim. Sci. 76(8): 2146–2154.

Thompson, R.W.; Fribourg, H.A.; Waller, J.C.; Sanders, W.L.; Reynolds, J.H.; Phillips, J.M.; Schmidt, S.P.; Crawford, R.J.; Allen, V.G.; & Faulkner, D.B. (1993). Combined analysis of tall fescue steer grazing studies in the Eastern United States. J. Anim. Sci. 71(7): 1940–1946.

Vignolio, O.R. & Colabelli, M.N. (2007). Supervivencia de las semillas de Lolium multiflorum Lam. y del endófito Neotyphodium occultans Moon al pasaje por el tracto digestivo en vacunos . Comunicación. Rev. Arg. Prod. Anim. 28(1): 1–6.

47

Wang, H.; Looper, M.L.; Johnson, Z.B.; Rorie, R.W.; & Rosenkrans, C.F. (2009). Involvement of signaling pathways in bovine sperm motility, and effect of ergot alkaloids. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Animal 45(8): 483–489.

Westendorf, M.L.; Mitchell, G.E.; Tucker, R.E.; Bush, L.P.; Petroski, R.J.; & Powell, R.G. (1993). In Vitro and In Vivo Ruminal and Physiological Responses to Endophyte-Infected Tall Fescue. J. Dairy sci. 76(2): 555–563.

Related documents