Data collection process

Con la finalidad de indicar en los perfiles cromatográficos el o los picos potencialmente responsables de la actividad antiinflamatoria de las muestras, el coeficiente de regresión antes y después del alineamiento entre especies fue evaluado (Figura 16). Picos de metabolitos potencialmente responsables corresponden a picos negativos en el coeficiente de regresión.

Estudio del coeficiente de regresión de los perfiles no-alineados resulto en la indicación de 8 picos principales (8.15, 16.52, 16.77, 17.68, 17.82, 19.78, 19.93 y 27.03 minutos) señalados con (

↑

), así como otros de menor intensidad que también contribuyen con la actividad observada. Además, se encontró que los picos indicados en los perfiles no-alineados eran parecidos a los identificados en el modelo construido con los perfiles alineados (

↑

), tomando en cuenta pequeñas fluctuaciones en los tiempos de retención debido al proceso de alineamiento. Es importante mencionar, además, que en este último se observó la presencia de picos

Página 57

adicionales (

↑

), cuyo origen está relacionado con el des-alineamiento visto durante el alineamiento entre especies (Figura Y. Alineamiento entre 8 especies); motivo por el cual se consideró conveniente realizar sólo la interpretación de los perfiles no- alineados. Lo anterior indica que el alineamiento de especies sin información analítica adicional, introduce una alta probabilidad de alinear información no correspondiente.

En la Figura 17 se observan los perfiles cromatográficos de S. microphylla y S. albiflora, las dos especies con mayor actividad antiinflamatoria a dosis de 2 mg/oreja (no se incluye a S. lasiocephalla con actividad similar a S. albiflora) graficadas junto con el coeficiente de regresión OPLS. Para ambas especies, se observó coincidencia en los picos potencialmente antiinflamatorios a 16.77, 19.93, 22.83 y 28.67 minutos; adicionalmente, S. microphylla presento dos picos más, uno al minuto 16.52 y otro al 27.03. La mayor actividad antiinflamatoria de S. microphylla puede estar relacionada a una interacción (e.g. efecto aditivo o sinergia) positiva entre los metabolitos de los picos adicionales y los otros metabolitos indicados. Los perfiles químicos observados para estas dos especies, señalan una probable semejanza en cuanto a metabolitos con actividad antiinflamatoria. Análisis fitoquímicos de S. albiflora serían de particular importancia, debido a que actualmente no se cuenta con reportes para esta especie.

En la Figura 18 se comparan las especies con actividad media, esto es, S. misella, S. coccinea y S. mocinoi con el coeficiente OPLS. En S. mocinoi sólo se visualizaron 4 picos activos a los minutos 18.52, 19.93, 20.23 y 28.67. La muy baja concentración observada en los primeros tres picos es posiblemente la causa de su menor actividad respecto a las otras dos especies. Para S. coccinea solamente se identificaron 3 picos a los minutos 14.42, 14.60 y 28.98; este último, aunque ligeramente más adelantado que su pico correspondiente en el coeficiente, fue tomado en cuenta por presentar un patrón similar al resto de las especies en la sección comprendida entre los minutos 27.97 a 29.40 (ver Figura 9). Pese a sólo presentar 3 picos potencialmente activos, la actividad antiinflamatoria observada fue buena (48.95%), probablemente el pico a 14.42 min presente solamente en esta

Página 58

especie y S. purpurea intervenga en mayor medida. En relación a S. misella se identificaron 5 picos potencialmente activos a los minutos 9.25, 12.22, 20.38, 22.83 y 28.67, los últimos dos picos presentes también en S. microphylla y albilfora. Cabe mencionar que esta especie fue la única en presentar dos picos (9.25 y 12.22) con carácter más polar respecto al resto de picos señalados en las demás especies, considerando el gradiente de elución empleado.

En el Figura 19 se visualizan los cromatogramas de las tres especies con menor actividad antiinflamatoria, es decir, S. tiliifolia, S. purpurea y S. xalapensis, así como el coeficiente de regresión. En S. tiliifolia fue posible apreciar 4 picos con potencial actividad a los minutos 16.77, 17.55, 22.83 y 28.67. La notable concentración en el primer pico permite inferir una mayor participación respecto a los otros constituyentes en la actividad observada. Para S. purpurea se observaron 5 picos activos a los minutos 16.40, 16.53, 19.93, 22.83 y 28.67. Respecto a S. xalapensis se identificaron 9 picos potenciales a los 8.15, 16.52, 17.68, 17.82, 18.53, 19.78, 22.83, 27.03 y 28.67 minutos. Los resultados para estas dos últimas especies sugerían una mayor actividad antiinflamatoria en el modelo de inflamación aguda; sin embargo, biológicamente no fue así. La notable menor actividad para estas dos especies, permite suponer la presencia de constituyentes con actividad antagónica a las moléculas activas, ya que como se sabe moléculas con similar estructura química, bioquímicamente pueden competir por el mismo sitio de unión a un blanco, o interaccionar entre ellas, con una consecuente disminución del efecto farmacológico.

De acuerdo a los tiempos de retención observados para los picos potencialmente activos, es posible considerar que moléculas con polaridad media como terpenos y flavonoides previamente reportados en diversas especies de Salvia, son las responsables de la actividad antiinflamatoria observada. Algunos de estos metabolitos aislados también en otras plantas han sido probados en el mismo modelo del presente trabajo con buenos resultados; por ejemplo el ácido ursólico (AU) y su isómero estructural el ácido oleanólico (AO) cuya actividad antiinflamatoria fue demostrada por N. Banno et al. (2004)[109] al inhibir el edema auricular en un

Página 59

90 y 73% respectivamente. AU ha sido reportado para las especies de S. mic[67],

S. pur[77], y S. xal[78], mientras AO en S. mic[70], y S. pur[77].

Otro metabolito con propiedades antiinflamatorias es el diterpeno 10β- hidroxilinearolactona, aislado de hojas y flores en S. mic por Bautista Redonda F.E, (2012)[75]. Dicho terpeno mostró un efecto inhibitorio del 54.26% en el modelo de TPA. Adicionalmente S. mic[67],S. pur[77] y S. coc[84] presentan el metabolito β-

sitosterol, del cual se han realizado numerosos estudios validando su acción antiinflamatoria, uno de ellos fue el efectuado por Backhouse N, 2007[110]. En dicho estudio se demostró el potente efecto inhibitorio del β-sitosterol al ser aplicado tópicamente en el modelo ya comentado, obteniendo valores de inhibición de 83.7%. Dos metabolitos más con probada actividad son el betulinol y ácido betulínico, triterpenos presentes en S. coc[84], S. xal[78], y S. purpurea[77], I. Huguet et al. (2000)[111] evaluaron su efecto antiinflamatorio en el mismo modelo de TPA, encontrando porcentajes de inhibición del 45 y 48% respectivamente. Finalmente y considerando los resultados de trabajos realizados previamente por C. Tistaert et al. (2011, 2012)[59,62], en los cuales identificaron diversas moléculas con probada actividad antioxidante (mallananoside A y B, quercetina y kaempferol 7-O-ramnósido) [60,61] y citotóxica (malloapelta A y B) respectivamente, mediante el modelo de regresión OPLS, se puede considerar la utilidad del modelo en la determinación de metabolitos bioactivos.

Página 60

Figura 16. Coeficiente de regresión antes y después del alineamiento -0.21 -0.16 -0.11 -0.06 -0.01 0.04 0.09 0.14 0.19 0.24 0.02 0.72 1.42 2.12 2.82 3.52 4.22 4.92 5.62 6.32 7.02 7.72 8.42 9.12 9.82 _{10.52 11.22 11.92 12.62 13.32 14.02 14.72 15.42 16.12 16.82 17.52 18.22 18.92 19.62 20.32 21.02 21.72 22.42 23.12 23.82 24.52 25.22 25.92 26.62 27.32 28.02 28.72 29.42 30.12 30.82 31.52 32.22 32.92 33.62 34.32 35.02 35.72 36.42 37.12 37.82 38.52 39.22 39.92} AU -0.26 -0.16 -0.06 0.04 0.14 0.24 0.02 0.72 1.42 2.12 2.82 3.52 4.22 4.92 5.62 6.32 7.02 7.72 8.42 9.12 9.82 _{10.52 11.22 11.92 12.62 13.32 14.02 14.72 15.42 16.12 16.82 17.52 18.22 18.92 19.62 20.32 21.02 21.72 22.42 23.12 23.82 24.52 25.22 25.92 26.62 27.32 28.02 28.72 29.42 30.12 30.82 31.52 32.22 32.92 33.62 34.32 35.02 35.72 36.42 37.12 37.82 38.52 39.22 39.92} AU Especies no alineadas Especies alineadas min min

Página 61

Figura 17. Perfiles cromatográficos de S. microphylla y S. albiflora vs coeficiente de regresión.

0.8 0.7 0.6 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 0 min AU S. microphylla S. albiflora OPLS

Página 62

Figura 18. Perfiles cromatográficos de S. coccinea, S. misella y S. mocinoi vs coeficiente de regresión.

0.7 0.6 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 0 min AU OPLS S. coccinea S. mocinoi S. misella

Página 63

Figura 19. Perfiles cromatográficos de S. purpurea, S. xalapensis y S. tiliifolia vs coeficiente de regresión.

OPLS S. tiliifolia S. purpurea S. xalapensis min 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0 AU

Página 64

9. Conclusiones

Habiéndose llevado a cabo tanto la evaluación farmacológica como los análisis quimiométricos (PCA y OPLS) para los extractos etanólicos de las nueve especies del género Salvia, colectadas en Xalapa y municipios aledaños, es posible concluir lo siguiente:

Todas las especies de Salvia presentaron diferencia estadística significativa cuando se aplicaron tópicamente a dosis de 2 mg/oreja.

A excepción de Salvia tiliifolia y Salvia lasiocephala, el resto de las especies evaluadas también disminuyeron el edema auricular a dosis menor (1 mg/oreja).

Existe linealidad entre los resultados predichos por el modelo OPLS y los valores experimentales, respecto a la actividad antiinflamatoria, con un rango de desviación de -1.33 a 0.71%.

En el presente estudio se obtuvo evidencia que las especies de Salvia utilizadas en padecimientos de tipo inflamatorio, presentan todas actividad antiinflamatoria.

Mediante el modelo de regresión OPLS fue posible determinar los picos responsables de la actividad antiinflamatoria en las especies de Salvia evaluadas.

Página 65

Referencias

[1]Taddei-Bringas, G.A.; Santillana-Macedo, M.A.; Romero-Cancio, J.A.; Romero- Téllez, M.B. Acceptance and use of therapeutic medical plants in family medical care. Salud Pública Mex. 1999 41, 216–220

[2]Del Ángel-Vicente, J. M. Plantas medicinales de una comunidad Náhuatl de la congregación Galera, mpio. de Tantoyucan, Veracruz. Un estudio etnobotánico. Tesis de licenciatura, facultad de biología, Universidad Veracruzana, 1995.

[3]Gheno-Heredia, Y. A.; Nava-Bernal, G.; Martínez-Campos, A. R.; Sánchez-Vera, E. Las plantas medicinales de la organización de parteras y médicos indígenas tradicionales de Ixhuatlancillo, Veracruz, México y su significancia cultural. Polibotanica. 2011, (31), 199-251

[4]Garrido-Vargas, A. Etnografía y análisis del uso de plantas medicinales de ocho comunidades mestizas del municipio de Catemaco, Veracruz. Tesis de licenciatura, Facultad de ciencias biológicas y agropecuarias, Universidad Veracruzana, 1997.

[5]Consultado el 16 de septiembre 2013 en

http://www.medicinatradicionalmexicana.unam.mx/monografia.php?l=3&t=&id=772 0

[6]Sosa, V.; Gómez-Pompa, A. Flora de Veracruz. Instituto de Ecología A.C. Xalapa, Ver. University of California, Riverside, CA. Fascículo 82 septiembre, 1994. México. [7]Cornejo-Tenorio, G. Diversidad y distribución del genero Salvia (Lamiaceae) en Michoacán, México. Revista Mexicana de Biodiversidad. 2011, 82, 1279-1296. [8]Cabrera-Aguilar, Raquel. Plantas medicinales del municipio de Tlalnelhuayocan, Veracruz, Tesis de licenciatura, facultad de biología, Universidad Veracruzana, 2010

[9]Martínez-Bolañoz, A. K. Plantas medicinales del barrio de Santa cruz, municipio de tequila. Un enfoque etnobotánico. Tesis de licenciatura, facultad de biología, Universidad Veracruzana, 2012

[10]Rodríguez-Hann, L.; Cárdenas, J. Comparative chemotaxonomy in Labiatae. Currents Topics in Phytochemistry. 1999, 2, 91-102

[11]J. P. Cannell. Natural products isolation, methods in biothecnology. Human Press Inc:USA. 1998

[12]G. Alaerts.; S. Pieters.; H. Logie.; J. V. Erps.; Merino-Arévalo, María.; B. Dejaergher. Exploration and classification of chromatographic fingerprints as additional tool for identification and quality control of several Artemisia species. Journal of pharmaceutical and biomedical analysis. 2014, 95, 34-46

Página 66

[13]Foo-Tim, Chau.; Hoy-Yan, Chan.; Chui-Yee, Cheung.; Cheng-Jian, Xu. Recipe for uncovering the bioactive components in herbal medicine. 2009, 81, 7217-7225 [14]Del Campo, R. M. La botánica entre los Naguas. Instituto de Biología, Facultad de Ciencias, UNAM. México. 1976.

[15]Cano. A. L. M. Flora medicinal de Veracruz I. Inventario etnobotánico. Universidad Veracruzana: México, 1997.

[16]Olavarrieta, M. M. Magia en los Tuxtlas. Colección presencias. Dirección general de publicaciones del consejo nacional para la cultura y las artes. Instituto Nacional Indigenista: México, 1979.

[17]Calatayud-García, A. Estudio etnobotánico de plantas medicinales en una comunidad nahua de la sierra de Santa Martha, Ver. Tesis de licenciatura, facultad de biología, Universidad Veracruzana, 1990.

[18]Consultado el 15 de septiembre 2013 en

http://www.us.elsevierhealth.com/media/us/samplechapters/9781416066279/Chapt er%2001.pdf

[19]Hoffman, D. Medical herbalism, the science and practice of herbal medicine. Healing Arts Press: India, 2003.

[20]Vázquez-Domínguez, G.; Berlin, B.; Castro-Ramírez, A. E. Revisión de la diversidad y patrones de distribución de Labiatae en Chiapas. Anales del instituto de biología. Serie botánica. 2002, 73 (1): 39-80.

[21]Villaseñor, J. L. Diversidad y distribución de las Magnoliophyta de México. Interciencia. 2003, 28(3), 160-167.

[22]Instituto de Ecología, A.C (INECOL). Xalapa, México.

[23]Calderón-de-Rzedowski, G.; Rzedowki, J. Flora fanerogámica del Valle de México. Instituto de Ecología A.C.: México, 2010.

[24]Consultado el 11 de agosto 2013 en

http://www.medicinatradicionalmexicana.unam.mx/monografia.php?l=3&t=Mirto_roj o&id=7721

[25]Navarro-Pérez, LC.; Avendaño-Reyes, S. Flora útil del municipio de Astacinga, Veracruz, México. Polibotánica. 2002, 14, 67-84.

[26]García-Pérez, V. Plantas medicinales de uso en traspatio en la zona centro del estado de Veracruz, México. Tesis de licenciatura, facultad de biología, Universidad Veracruzana, 2009.

[27]Consultado el 12 de agosto 2013 en

http://www.medicinatradicionalmexicana.unam.mx/monografia.php?l=3&t=Lana_o_ salvia&id=7876

Página 67

[28]Consultado el 12 de agosto 2013 en

http://www.medicinatradicionalmexicana.unam.mx/monografia.php?l=3&t=Mirto&id =7718

[29]Aguilar, A.; Camacho, J. R.; Chino, S.; Jácquez, P.; López, M. E. Herbario medicinal del Instituto Mexicano del Seguro Social. Instituto Mexicano del Seguro Social: México. 1994.

[30]Consultado el 12 de agosto 2013 en

http://www.medicinatradicionalmexicana.unam.mx/monografia.php?l=3&t=Hierba_ del_cáncer&id=7688

[31]Álvarez, J. Enciclopedia de México. Volúmen XII. Sabeca International Investment Corportation: México, 1993.

[32]Serhan, E. N.; Ward, O. A.; Gilroy, D. W. Fundamentals of inflammation. Cambridge University Press: UK, 2010.

[33]Flores-Jesús.; Armijo. Farmacología Humana. Tercera ed. Editorial Masson, S.A.: España, 1997.

[34]Aschwanden, C. Herbs for health, but how safe are they?. Bulletin of the World Health Organization, 79 (7), 2001.

[35]Jian-Liang, Z.; Lian-Wen, Q.; Ping, L. Herbal medicine analysis by liquid chromatography/time-of-flight mass spectrometry. Journal of Chromatography A. 2009, 1216, 7582-7594.

[36]Waksmunzka-Hajnos, M.; Sherma, J. High performance liquid chromatography in phytochemical analysis. CRC Press Taylor & Francis Group: USA, 2011.

[37]Anjoo, K. Analytical Evaluation of Herbal Drugs. Drug Discovery Research in Pharmacognosy. 2012, 23-59.

[38]Canell, R. Natural products isolation. Humana Press Inc: USA, 1998.

[39]Haidy, A. G. Application of Chemometrics in Authentication of Herbal Medicines: A Review. Phytochemical Analysis. 2012, 24, 1-24.

[40]Gemperline, P. Practical guide to chemometrics. Segunda ed. CRC Taylor & Francis: USA, 2006.

[41]Lucio-Gutiérrez, J. R. Aplicación de métodos quimiométricos para la caracterización y control de calidad de plantas medicinales. Tesis de doctorado, facultad de ciencias, Universitat Autónoma de Barcelona, 2012.

[42]Liang, YZ.; Xie, PS.; Kelvin, C. Quality control of herbal medicines. J Chromatography B. 2004, 812, 53-70.

Página 68

[43]Chandra, S.; Lata, S. Biotechnology for medicinal plants. Springer: USA, 2013. [44]Brereton, R. G. Applied Chemometrics for Scientist, John Wiley & Sons, Ltd: Great Britain, 2007.

[45]Talavera-Bustamante, I.; Bustio-Martínez, L.; Coma-Peña, Y. Quimiometrix II, una plataforma automatizada para el procesamiento multivariante de datos químicos y bioquímicos. Experiencias de aplicación. Revista cubana de Química. 2013, 25, 257-265.

[46]Hendriks, M. M. W. B.; Cruz‐Juarez, L.; Bont, D. D.; Hall, R. D. Preprocessing and exploratory analysis of chromatographic profiles of plant extracts. Anal. Chim. Acta. 2005, 545, 53‐64.

[47]Zhang, Z. M.; Chen, S.; Liang, Y. Z. Baseline correction using adaptive iteratively reweighted penalized least squares. Analyst. 2010, 135, 1138-1146.

[48]Brereton, R. G. Chemometrics data analysis for the laboratory and chemical plant. Wiley: England, 2003.

[49]Christin, C.; Smilde, A. K.;Hoefsloot, H. C. J.; Suits, F.; Bischoff, R.; Horvatovich, P. L. Optimized time alignment algorithm for LC-MS data: Correlation Optimized Warping using component detection algorithm-selected mass chromatograms. Anal. Chem. 2008, 80, 7012-7021.

[50]Nielsen, N. V.; Carstensen, J. M.; Smedsgaard, J. Aligning of single and multiple wavelength chromatographic profiles for chemometric data analysis using correlation optimised warping. Journal of Chromatography A. 1998, 805, 17‐35. [51]Skov, T.; van den Berg, F.; Tomasi, G.; Bro, R. Automated alignment of chromatographic data. Journal of Chemometrics. 2006, 20, 484‐497.

[52]Bylesjô, M. Normalization and clousure. Tomado de: Comprehensive chemometrics. Chemical and Biochemical Data Analysis. 2009, 110-124.

[53]Erikkson, L.; Lohanzon E.; Kettanhe-Wold, N. Multi and megavariate data analysis. Part 1.Segunda ed. Umetrics AB: Suecia, 2006.

[54]Varmuza, K.; Filzmoser, P. Introduction to multivariate statistical analysis in chemometrycs. Taylor & Francis Group: USA, 2009.

[55]Cordella, C. B. Y. PCA: The Basic Building Block of Chemometrics, Capitulo I. Tomado de: Analytical chemistry, InTech: USA, 2012.

[56]Willard, M. A. B.; McGuffin, V. L.; Smith, R. W. Forensic analysis of Salvia divinorum using multivariate statistical procedures. Part II: asocciation of adulterated samples to S. divinorum. Anal Bioanal Chem. 2012, 402, 843-850.

Página 69

[57]Dumarey, M.; van Nederkassel, A.M.; Deconinck, E.; Vander Heyden, Y. Exploration of linear multivariate calibration techniques to predict the total antioxidant capacity of green tea from chromatographic fingerprints. Journal of Chromatography A. 2008, 1191, 81-88.

[58]Tistaert, C.; Dejaegherm B.; Chataigné, G.; Riviére, C.; Vander Heyden, Y. Potential antioxidant compounds in Mallotus species fingerprints. Part II: Fingerprint alignment, data analysis and peak identification. Analytica Chimica Acta. 2012, 721, 35-43.

[59]Vandeginste, B. G. M.; Masart D. L.; Buydens. Handbook of chemometris and Qualimetrix, Parte B. Elsevier, Amsterdan, 1998.

[60]Tistaert, C.; Dejaegherm B.; Chataigné, G.; Van Minh, C.; Quetin-Leclercq, J.; Vander Heyden, Y. Dissimilar chromatographic systems to indicate and identify antioxidants from Mallotus species. Talanta. 2011, 83, 1198-1208.

[61]Kiem, P. V.; Mai, N. T.; Minh, C. V.; Kim, Y. H. Two new C-Glucosyl benzoic acids and flavonoids from Mallotus nanus and their antioxidant activity nanus and their antioxidant activity. Arch Pharm Res. 2010, 33, 203-208.

[62]Zhang, M.; Swarts, S. G.; Yin, L.; Okunieff, P. Antioxidant properties of quercetin. Advances in Experimental Medicine and Biology. 2011, 701, 283-289.

[63]Tistaert, C.; Chataigne, G.; Vander Heyden, Y. Multivariate data analysis to evaluate the fingerprint peaks responsible for the cytotoxic activity of Mallotus species. Journal of Chromatography B. 2012, 910, 103-113.

[64]Hernández-Ortiz, M. Estudio fitoquímico de Salvia regla Cav. Tesis de licenciatura, facultad de ciencias químicas, Universidad Veracruzana, 1986.

[65]Ramírez-Dávalos, N. Estudio fitoquímico de Salvia mexicana variedad mexicana. Tesis de licenciatura, facultad de química farmacéutica biológica, Universidad Veracruzana, 1999.

[66]Frontana-Uribe, B. A.; Escárcega-Bobadilla, M. V. A New Languidulane Diterpenoid from Salvia mexicana var. mexicana. Molecules. 2011, 16, 8866-8873. [67]Collera, O.; Gomora, E. Salviolida, una nueva lactona triterpenica. Revista latinoamericana de química. 1980, 2 (11), 60-62.

[68]Argumedo-Delira, R. Aislamiento y transformación química de algunos triterpenos antiinflamatorios de Salvia mexicana L. var. minor Benth. Tesis de licenciatura, facultad de estudios superiores Cuahutitlán, Universidad nacional autónoma de México, 2004.

[69]Paleo-González, E. L. D. Estudio fitoquímico de Salvia longispicata. Tesis de licenciatura, facultad de química, Universidad nacional autónoma de México, 2004.

Página 70

[70]Martínez-Cruz, N del S. Estudio fitoquímico de Salvia microphylla variedad neurepia. Tesis de licenciatura, facultad de ciencias químicas, Universidad Veracruzana, 1988.

[71]Esquivel, B.; Cárdenas, J. The diterpenoid constituents of Salvia fulgens and Salvia microphylla. Journal of natural products. 1987, 50 (4), 738-740.

[72]Bautista-Redonda, F. E. Elucidación estructural y evaluación de la actividad biológica de diterpenos tipo neo-clerodanos aislados de Salvia herbacea, S. shannoni y S.microphylla. Tesis doctorado, Universidad nacional autónoma de Mexico, 2012.

[73]Aydogmus, Z., Yesilyurt, V., Topcu, G. Constituents of Salvia microphylla. Natural Product Research. 2006, 20, 775-781.

[74]Bautista, E.; Toscano, R. A. Microphyllandiolide, a New Diterpene with an Unprecedented Skeleton from Salvia microphylla. Organic Letters. 2013, 15, 3210- 3213.

[75]Jaime-Vasconcelos, M. A.; Frontana-Uribe, B. A. Structure of Salvioccidentalin, a Diterpenoid with a Rearranged neo-Clerodane Skeleton from Salvia occidentalis. Molecules, 2011, 16, 9109-9115.

[76]Calzada, F.; Yepez-Mulia, L. Evaluation of the Antiprotozoal Activity of Neo- clerodane Type Diterpenes from Salvia polystachya against Entamoeba histolytica and Giardia lamblia. Phytotherapy Research. 2010, 24, 662–665.

[77]Maldonado, E.; Ortega, A. Polystachynes A-E, cis-neo-clerodane diterpenoids from Salvia polystachya. Phytochemistry, 2000, 53, 103-109.

[78]Bautista-Redonda, F. E. Aislamiento de identificación de los componentes químicos de Salvia polystachya. Tesis de licenciatura, Universidad nacional autónoma de México, 2007.

[79]Ortega, A.; Bautista, E. Polystachyne F, a 5,10-seco-Neoclerodane from Salvia polystachya. Chem. Pharm. Bull. 2006, 54(9), 1338-1339.

[80]Hernández-Ortega, S. Estudio fitoquímico de Salvia purpurea Cav. Tesis de licenciatura, facultad de química farmacéutica biológica, Universidad Veracruzana, 1989.

[81]Tello-Aburto, R. Estudio fitoquímico de Salvia xalapensis Benth. Tesis de maestría, programa de maestría y doctorado en ciencias químicas. Universidad nacional autónoma de México, 2002.

[82]Baldomero, E.; Tello, R. Unsaturated Diterpenoids with a Novel Carbocyclic Skeleton from Salvia xalapensis. J. Nat. Prod. 2005, 68, 787-790.

[83]Marquina, S.; García, Y. 3-Acetoxy-7-methoxyflavone, a novel flavonoid from the anxiolytic extrac from Salvia elegans (Lamiaceae). 2008, 3 (2), 185-188.

Página 71

[84]Esquivel, B.; Dominguez, R. M. Salvigenane and Isosalvipuverulan Diterpenoids from Salvia leucantha. Tetrahedron, 1994, 50 (40), 11593-11600.

[85]Rodriguez-Hahn, L.; O’Reilly, R. Tilifodiolide, Tetraline-Type Diterpenoid of Clerodanic Origin from Salvia tiliaefolia. J. Org. Chem. 1990, 55, 3522-3525.

[86]Winston-Quiñones, J. G. L., Echeverri, F. Tilifolidione, a cycloheptanenaphthoquinone-type diterpenoid of abietanic origin from the roots of Salvia tiliaefolia. Phytochemistry, 1994, 36, 115-117.

[87]Martin, G. D. A., Reynolds, W. F., Reese, P. B. Analysis of Salvia coccinea from jamaican populations. Natural product communications, 2009, 4, 789-790.

[88]Savona, G., Bruno, M., Paternostro, M., Marco, J. L., Rodríguez, B. Salviacoccin, a neo-clerodane diterpenoid from Salvia coccinea. Phytochemistry, 1982, 21, 2563- 2566

[89]Bustos-Brito, C. Estudio biodirigido de los componentes antiinflamatorios de Salvia thymoides Benth. Tesis de maestría, programa de maestría y doctorado en ciencias químicas, Universidad nacional autónoma de México, 2011.

[90]Bernabé-Garduza, J. L. Evaluación del Potencial Antioxidante, Actividad Anti- inflamatoria y Analgésica de los Extractos Orgánicos de Salvia purpurea. Tesis de licenciatura, facultad de química farmacéutica biológica, Universidad Veracruzana, 2012.

[91]Monterrosas–Brisson, N. Actividad antiinflamatoria y antiacetilcolinesterasa de Salvia elegans Vahl propagada vegetativamente y desarrollada en diferentes intensidades luminosas. Tesis de maestría, centro de desarrollo de productos bióticos, Instituto Politécnico Nacional, 2008.

[92]Young, J.; De Young, L. Cutaneous models of inflammation from the evaluation of topical and systemic pharmacological agents. Pharmacological methods in the control of inflammation. Ed. Chang JY, Lewis AJ. 1989.

[93]Epling, C. A revision of Salvia, subgenus Calosphace. Repertorium specierum novarum regni vegetabilis. 1939, 110:1-383.

[94]Espejo-Serna, A.; Ramamoorty T.P. Revisión Taxonómica de Salvia sección Sigmoideae (Lamiaceae). Acta Botánica Mexicana. 1993, 23, 65-102.

[95]Elmezogi, J.; Zetrini, A. Evaluation of anti-inflammatory activity of some Libyan medicinal plants in experimental animals. Arch. Biol. Sci., 2012, 64 (3), 1059-1063. [96]Argumedo-Delira, R.; Parra-Delgado, H. Isolation and chemical transformations of some anti-inflammatory triterpenes from Salvia mexicana L. var. minor Benth. Revista de la Sociedad Química de México, 2003, 47 (2), 167-172.

Página 72

[97]Bralley Eve, E.; Greenspan, P. Topical anti-inflammatory activity of Polygonum cuspidatum extract in the TPA model of mouse ear inflammation. Journal of Inflammation. 2008, 5 (1), 1-7.

[98]Katzung, G. B.; Masters, S.B.; Trevor, A.J. Farmacología básica y clínica. Onceava ed. Mc Graw Hill: New York, 2009.

[99]Ibrahim,T. A. Chemical composition and biological activity of extracts from Salvia bicolor Desf. growing in Egypt. Molecules 2012, 17, 11315-11334.

[100]Marquez-Flores, Yazmin K.; Montellano-Rosales, H. Anti-inflammatory activity of aqueous and methanolic extracts of Oenothera rosea L´ Hér. ex Ait in the rat. Revista Mexicana de Ciencias Farmacéuticas. 2009, 40 (3), 11-16.

[101]Z-M Zhang, S. Chen, Y-Z Liang, Peak alignment using wavelet pattern matching and differential evolution, Talanta. 2011, 83, 1108-1117.

[102]L. R. Snyder, J. W. Dolan, High performance gradient elution, Wiley: USA, 2007.

[103]N.P.V. Nielsen, J.M. Carsensen, J. Smedsgaard, J, Alinning of single and multiple and multiple wavelength chromatographic profiles for chemometric data analysis using correlation optimised warping, Journal of chromatography A. 1998, 805, 17-35.

[104]Jiang, W.; Zhang, Z-M.; Yung, Y-H.; Zhan, D-J.; Zheng, Y-B, Liang, Y-Z, Yang, Z. Y.; Yu, L. Comparisons of five algorithms for chromatogram alignment, Chromatographia. 2013, 76, 1067-1078.

[105]T. Skov, F. van den Berg, G. Tomasi, R. Bro, Automated alignment of chromatographic data, Journal of chemomemetrics. 2006, 20, 484-497.

[106]Eilers, P.H.C. Parametric time warping, Anal. Chem. 2004, 76, 404-411. [107]K.A. Veselkov, J.C. Lindon, T.M.D. Ebbels, D. Crockford, V.V. Volynkin, E. Holmes, D.B. Davies, J.K. Nicholson, Recursive segment-wise peak alignment of

In document Monitoring and Evaluation Manual. Prepared for ADRA International Food Security Department (Page 68-70)