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Figura I13. Efecto de la disminución de miR310s en embriones de D. melanogaster(A‐F) Cutículas de  embriones microinyectados con oligos antisentido contra cada uno de los miembros de la familia miR‐ 310(A) miR‐310(B) miR‐311(C) miR‐312(D‐E) miR‐313 y (F) miR‐92. Se observa que todos ellos  presentan defectos de IC junto con defectos de RBG (miR‐313) y/o de segmentación (miR‐313miR‐310).  Los embriones están orientados dorsalmente y con su parte anterior a la izquierda. (G) Transferencia 

Northern que muestra la expresión, a lo largo del desarrollo de D. melanogaster, de los miR‐310s y miR‐ 92a. A la derecha se muestra el alineamiento de las secuencias de los miARNs donde se destacan las  zonas comunes (sombreadas) y la diferencia en las secuencias 3´ (secuencias fuera del recuadro). Figura  extraída de Leaman et al., 2005.  

 

1.3.6. Proteínas implicadas en uniones celulares y citoesqueleto    

El  movimiento  tisular  va  asociado  a  las  reorganizaciones  en  el 

citoesqueleto y en las uniones celulares, por lo que no es de extrañar que 

mutantes de componentes estructurales o motores asociados a membranas y 

uniones celulares presenten defectos de CD y de IC.    

Las uniones celulares deben ser dinámicas durante la migración y la fusión 

de  las  capas  epidérmicas.  Además,  estas  uniones  integran  y  transmiten 

información del ambiente, como tensiones o fuerzas generadas por otros tejidos, 

hacia el interior de la célula (Tepass et al., 2001; Gorfinkiel y Martínez‐Arias, 

2007). Numerosos trabajos han relacionado las uniones celulares adherentes con 

el  CD (Grevengoed  et al., 2001;  Bloor y Kiehart, 2002; Magie et  al., 2002; 

McEwen et al., 2000; Fox et al., 2005; Takahashi et al., 2005; Murray et al., 2006). 

Estas uniones se localizan en la parte apical de las células epiteliales formando un 

cinturón que conecta el citoesqueleto de actina entre las células adyacentes 

(Bryant,  1997)  (Fig.  I14.A).  Embriones  mutantes  de  genes  que  codifican 

componentes de estas uniones como cno, arm (Jurgens et al., 1984; Tateno et  al., 2000; Ntwasa et al., 2001), el complejo Par (David et al., 2010), polychaetoid 

(pyd), shotgun (shg) (Fox et al., 2005), la GTPasa pequeña Rho, Src (Takahashi et  al., 2005),  Abl (Grevengoed et  al., 2001), y  echinoid (ed)  (Lin  et  al., 2007) 

presentan defectos de CD. El papel de Arm durante el CD es doble, por ser 

dependiente de la ruta  Wg y formar parte de las uniones tipo adherentes 

Bazooka (Baz) (Suzuki y Ohno, 2006; Goldstein y Macara, 2007) se localiza en la 

zona apical de las células de la AS, asociándose con Crumbs (Crb) y con la miosina 

(David et al., 2010). Shg, el homólogo en Drosophila de la E‐Cadherina, se localiza 

en la zónula adherens en el LE, entre las células de la AS y en la epidermis 

contribuyendo a la transmisión de las fuerzas producidas durante este proceso. 

Además embriones mutantes para shg presentan defectos de IC (Sanson et al., 

1996; Gorfinkiel y Martínez‐Arias, 2007). El complejo Par actúa conjuntamente 

con la miosina, regulando las contracciones de la AS durante el CD. Mediante 

análisis de mutantes de pérdida y de ganancia de función se ha observado que 

los  componentes  del  complejo  Par  regulan  diferentes  fases  del 

ensamblaje/desensamblaje de  la  actina‐miosina  en  la  AS.  Baz  promueve  la 

duración de los pulsos de actina‐miosina y Par‐6/aPKC promueve pausas de 

polimerización entre los pulsos (David et al., 2010).   

Algunos mutantes de genes que codifican componentes de las uniones 

septadas también presentan defectos de CD como cora (Lamb et al., 1998), nrx 

IV (Baumgartner et al., 1996; Ward et al., 1998), dlg, scrib, lgl (Perrimon, 1988; 

Bilder y Perrimon, 2000; Arquier et al., 2001) y yurt (yrt) (Hoover y Bryan, 2002). 

Dlg, Scrib y Lgl forman el complejo Scrib que durante el CD se elimina del LE, lo 

que  promueve  la  acumulación  lateral  de  integrinas  en  esa  zona  frontera, 

haciendo que se ancle Pak y se restaure la localización de Scrib durante el sellado 

de las capas laterales (Bahri et al., 2010). Grainy head (Grh) es un factor de 

transcripción que regula la expresión de Cora, Fas III y Sinuous (Sinus) en las 

uniones septadas durante el CD (Narasimha et al., 2008). Por otro lado, la 

miosina  no  muscular  de  tipo  II,  codificada  por  el  gen  zipper  (zip),  es  un 

componente del cable contráctil situado en las células epiteliales del LE y en la 

parte apical de las células de la AS (Franke et al., 2005). Asímismo, Crb, que se 

localiza en la parte apical de las membranas celulares, regula la morfogénesis de 

la AS (Harden et al., 2002).    

Otros componentes de adhesión celular que tienen papeles durante la IC 

son faint sausague (fas) y leak (lea). Ambos codifican inmunoglobulinas que 

median la unión entre células, así como la migración de éstas. Los mutantes de 

fas presentan agujeros anteriores (Nüsslein‐Volhard et al., 1984; Liu et al., 

1999), mientras que los de lea, presentan defectos en la formación de la cabeza 

y del ECF, aunque el CD se produce correctamente (Nüsslein‐Volhard et al., 

1984; Schimmelpfeng et al., 2001).    

Las uniones celulares también tiene un papel central en la fusión final de 

homólogo de la miosina XV), se expresa en el LE y en las extensiones celulares 

de las CMDs, siendo necesaria para la correcta alineación y fusión de las capas 

epiteliales (Liu et al., 2008). A diferencia de la actina, los microtúbulos son solo 

necesarios  para  la  interdigitalización  de  las  extensiones  de  las  células 

epidérmicas en el momento de la fusión de las capas laterales (Jankovics y 

Brunner, 2006).                          

Figura I14. Uniones celulares durante el cierre dorsal en la amnioserosa, el vitelo y la epidermis. (A)  Estructura esquemática de una célula epitelial de la epidermis embrionaria tardía. Los subdominios de la  membrana y las uniones celulares están indicadas a la izquierda y la distribución de las proteínas a la  derecha. El interrogante al lado de algunas proteínas indica que su localización debe ser confirmada.  Entre paréntesis se indica el sinónimo de algunas proteínas. Abreviaturas utilizadas: DE‐cad: DE‐  Cadherina; UG: unión tipo Gap; ZM: zona marginal; US: unión septada; ZA: zonula adherens. El  rectángulo rojo indica aquellas proteínas codificadas por genes implicados en CD. Imagen extraída de  Tepass et al. (2001) y actualizada (cuadrados morados). (B) Esquema de un corte transversal del agujero  dorsal de un embrión de estadio 13 mostrando la localización de algunas proteínas de las uniones  septadas (Fas III en azul; Cad DE, verde; Scrib, rojo), Par‐6 de las uniones adherentes (morado), la  integrina mys (amarillo) y la laminina A (rosa). Figura extraída y modificada de Gorfinkiel y Arias, 2007.   

Además, el CD está mediado por integrinas y proteínas de la matriz 

extracelular como  las  α‐lamininas.  scb codifica la integrina  α‐PS y  mys  la 

integrina  β‐PS. Ambas son necesarias para el mantenimiento de la adhesión 

entre la epidermis y la membrana del vitelo (Reed et al., 2004), entre la 

epidermis dorsal y las AS (Narasimha y Brown, 2004; Wada, 2007) y ayuda a la 

fusión de las capas epiteliales (Hutson et al., 2003) (Fig.I15). La laminina Lam‐A 

se localiza en la membrana basal de las células de la AS y de la epidermis por la 

acción de la proteasa de serinas Scarf (Scaf), una diana de la ruta de las JNKs 

(Sorrosal et al,. 2010).    

                                           

Figura I15. Defectos de cierre dorsal en mutantes para integrinas y  α‐lamininas. Fotografías de un  vídeo de lapso de tiempo del CD de un embrión (A) mys1 y (B) scarf∆1.5. Ambos mutantes presentan  defectos de sellado y de separación entre la epidermis y la AS. Fotografías extraídas de Gorkinfiel et al.,  2009 y Sorrosal et al., 2010. 

 

 

1.3.7. Transporte intracelular   

Estudios  recientes  han  relacionado  la  remodelación  de  las  uniones 

adherentes durante el CD con el transporte de sus componentes  mediante 

proteinas Rab. Así Rab5, Rab11 y Rab30 han sido implicadas en CD (Fig.I16) 

(Roeth et al., 2009; Sasikumar y Roy, 2009; Thomas et al., 2009). Mutantes de 

estas  proteínas  que  forman  vesículas  de  transporte  intracelular,  presentan 

defectos de CD por pérdida de uniones adherentes en las capas epiteliales 

laterales (Rab11, Roeth et al., 2009) o en el LE (Rab30, Thomas et al., 2009). El 

grupo del Dr. Noselli en Niza, (Francia), ha determinado que la expresión de 

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