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4. Claus E, Tayler V. Farmacognosia. 6º ed. Ed. El Ateneo. Cuba. 1995. pp. 135- 238.

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8. Miranda M, Cuellar A. Mención en Productos Naturales y Terapéuticos. Editorial Universidad de La Habana, Cuba. 2002.

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9. Melic A, Ribera I. La cronodiversidad biológica. Bol Sea [En internet] 1996. [Fecha de acceso: 2 de diciembre de 2010]; 16 (1), 189-206. Disponible en: http://www.sea-entomologia.org/PDF/BOLETIN_16/B16-022-189.pdf

10. Mostacero J. Taxonomía de las Plantas Fanerógamas Útiles del Perú. Ed. CONCYTEC; Trujillo – Perú. 2002. pp. 614 - 617.

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16. Miranda M. Farmacognosia y Productos Naturales. Ed. Félix Varela. Cuba. 2001.

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20. Brown T.: Química, La ciencia aplicada. 9º ed. Ed. Pearson. México. 2004. pp. 492.

21. Lock O. Investigación fitoquímica – métodos en el estudio de productos naturales. 2º ed. Ed. Fondo Editorial Pontificia Universidad Católica del Perú. Lima, Perú.1994:114-115.

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VII.ANEXOS

ANEXO 1

Boucher del ejemplar de herbario de la especie de Bejaria aestuans L.

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ANEXO 2

Fig. 1. Inflorescencias de Bejaria aestuans L. (purum-rosa).

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ANEXO 3

Fig. 3. Secado de las inflorescencias de Bejaria aestuansL. (purum-rosa).

Fig. 4. Extractos de diclorometano, etanólico y acuoso de Bejaria aestuans L.

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ANEXO 4

Fig. 5. Reacciones químicas del extracto de diclorometano de Bejaria aestuans L.

(purum- rosa). En el Tubo 1, Sudan (negativo); en el Tubo 2a, Dragendorff (positivo); en el Tubo 2b, Mayer (positivo); en el Tubo 2c, Wagner (positivo); en el Tubo 2d, Hager (negativo); en el Tubo 3, Baljet (negativo); en el Tubo 4, Lieberman Burchard (positivo).

Fig. 6. Reacciones químicas del extracto etanólico de Bejaria aestuans L.

(purum - rosa). En el Papel 1, Catequinas (negativo); en el Tubo 2, Resinas (negativo); en el Tubo 3, Fehling (positivo); en el Tubo 4, Baljet (positivo); en el Tubo 5, Lieberman - Burchard (positivo); en el Tubo 6, Espuma (positivo); en el Tubo 7, Cloruro férrico (positivo); en el Tubo 8, Bornträger (negativo); en el

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ANEXO 5

Fig. 7. Reacciones químicas del extracto etanólico de Bejaria aestuans L.

(purum - rosa). En el Tubo 10, Kedde (negativo); en el Tubo 11, Antocianidinas (positivo); en el tubo 12a, Dragendorff (positivo); en el Tubo 12b, Mayer (positivo); en el tubo 12 c, Wagner (positivo); en el tubo 12d, Hager (positivo).

Fig. 8. Reacciones químicas del extracto acuoso de Bejaria aestuans L. (purum- rosa). En el tubo1a, Dragendorff (positivo); en el tubo 1b, Mayer (positivo); en el tubo 1c, Wagner (positivo); en el tubo 1d, Hager (negativo); en el tubo 2, Gelatina

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ANEXO 6

Fig.9. Reacciones químicas del extracto acuoso de Bejaria aestuans L. (purum rosa). En el tubo 4, Shinoda (positivo); en el tubo 5, Fehling (positivo); en el tubo 6, Espuma (negativo); en el tubo 7, Mucílagos (negativo).

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ANEXO 7

TAMIZAJE FITOQUÍMICO DE LA Bejaria aestuans L. (Purum - rosa)

ESQUEMA I

EXTRACCIÓN SUCESIVA DEL MATERIAL VEGETAL PARA LA APLICACIÓN DE TÉCNICAS DE TAMIZAJE FITOQUÍMICO

Se extrajo con 180 mL de diclorometano por medio de maceración durante 48 horas.

FILTRAMOS EXTRACTO DE DICLOROMETANO Volumen = 75 mL RESIDUO SÓLIDO Se pesó y secó Wmuestra = 49.8177 g SE EXTRAJO CON 295 mL DE ETANOL DE 96º POR MEDIO DE MACERACIÓNDURANTE 65 HORAS

FILTRAMOS

RESIDUO SÓLIDO Se pesó y secó Wmuestra = 46.9133 g

SE EXTRAJO CON 250 mL DE AGUA DESTILADA POR MEDIO DE MACERACIÓN DURANTE 72 HORAS

FILTRAMOS EXTRACTO ALCOHÓLICO DE 96º Volumen = 110 mL EXTRACTO ACUOSO Volumen = 103 mL RESIDUO SÓLIDO Se pesó y secó Wmuestra = 42.5573 g MATERIAL VEGETAL 50 g

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ANEXO 8

ESQUEMA II

REACCIONES A REALIZAR EN EL EXTRACTO DE DICLOROMETANO

5mL ENSAYO DE LIEBERMANN- BUCHART (Triterpenos - Esteroides) 5mL ENSAYO DE SUDAN (Aceites y Grasas) 15mL (dividido en 3 porciones) ENSAYOS DE DRAGENDORFF MAYER Y WAGNER (Alcaloides) EXTRACTO DICLOROMETANO DIVIDIMOS EN FRACCIONES 5mL ENSAYO DE LIEBERMANN- BURCHARD (Triterpenos -Esteroides) 5mL ENSAYO DE BALJET (Lactonas y Cumarinas) 15mL (dividido en 3 porciones) ENSAYOS DE DRAGENDORFF MAYER, WAGNER Y HAGER (Alcaloides)

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ANEXO 9

ESQUEMA III

REACCIONES A REALIZAR EN EL EXTRACTO ALCOHOLICO AL 70º EXTRACTO ALCOHÓLICO DE 96º DIVIDIMOS EN FRACCIONES 1mL ENSAYO DE CATEQUINAS 2 mL ENSAYO DE RESINAS 2 mL ENSAYO DE FEHLING (Azúcares reductores) 2mL ENSAYO DE BALJET (Lactonas) 2mL ENSAYO DE LIEBERMAN- BURCHARD (Triterpenos y Esteroides) 2mL ENSAYO DE ESPUMA 2mL ENSAYO DE FeCl3 (Fenoles y Taninos) 2mL ENSAYO DE NINHIDRINA 2mL ENSAYO DE BORNTRÄGER (Quinonas) 2mL ENSAYO DE KEDDE (Cardenólidos) 2mL ENSAYO DE SHINODA 2mL 6 mL en 3 porciones ENSAYOS DE DRAGENDORFF MAYER, WAGNER Y HAGER (Alcaloides)

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ANEXO 10

ESQUEMA IV

REACCIONES A REALIZAR EN EL EXTRACTO ACUOSO

5 mL en 3 porciones

ENSAYO DE DRAGENDORFF, MAYER, WAGNER Y HAGER

(Alcaloides)

2mL

ENSAYO DE CLORURO FERRICO (Taninos) 2 mL ENSAYO DE SHINODA (Flavonoides) 2mL ENSAYO DE FEHLING (Azúcares Reductores) 2 mL ENSAYO DE ESPUMA (Saponinas) DIVIDIMOS EN FRACCIONES 10mL ENSAYO DE MUCILAGOS I ó II gotas ENSAYO DE PRINCIPIOS AMARGOS Y ASTRINGENTES 2mL

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ANEXO 11

REACCION DEL TRICLORURO FÉRRICO (para identificar fenoles y taninos)

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ANEXO 12

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ANEXO 13

REACCIÓN DE LA GELATINA (para identificar taninos)

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ANEXO 14

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ANEXO 15

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ANEXO 16

REACCIÓN DE DRAGENDORFF (para identificar alcaloides)

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ANEXO 17

REACCIÓN DE WAGNER (para identificar alcaloides)

In document The Non intrusive Detection of Incipient Cavitation in Centrifugal Pumps (Page 77-81)