• No results found

3.3 Structure of fuzzy rule based classifiers

3.3.1 Knowledge base learning approaches

Investigaciones previas han determinado la importancia del dominio C-terminal de FimH para su ensamblaje en la fimbria. La estructura del cristal de FimC- FimH muestra que existe una amplia interacción entre la chaperona FimC y el dominio C-terminal de FimH (Choudhury et al., 1999). El complejo formado por C-FimH/FimC se une al dominio periplásmico N-terminal de FimD (FimDN) in

vitro (Nishiyama et al., 2003). Recientemente, la resolución del cristal del complejo ternario formado por FimDN/C-FimH/FimC muestra interacciones

específicas entre C-FimH/FimC y FimDN que muestran que el usher es capaz

de discriminar entre FimC libre o unida a un dominio pilina (Nishiyama et al., 2005). Datos previos a nuestro trabajo también indicaban que los dos dominios de FimH, N y C terminales, cuando se expresan de forma independiente en el periplasma se recuperan junto a FimD6xhis (Barnhart et al.,

2003). Aunque este experimento indica una interacción física entre el dominio N-terminal de FimH y FimD, su importancia biológica para el ensamblaje de la fimbria no se había establecido. Nuestros resultados muestran la importancia

biológica de esta interacción entre el dominio N-terminal de FimH y FimD para la incorporación de FimH en la fimbria.

Un aspecto importante es el sitio/s específico de FimD implicado/s en la interacción con el dominio N-terminal de FimH. FimD es una proteína de gran tamaño (833 aminoácidos) que reconoce los complejos binarios dominio pilina- FimC en el periplasma y que media la translocación de las subunidades estructurales tipo pilina a través de la ME (Saulino et al., 2000). FimD además cataliza la formación de fibras facilitando las interacciones entre las subunidades pilina aceptora y donadora durante la reacción de intercambio de hojas β (Vetsch et al., 2006). Por analogía al usher PapC, se piensa que FimD contiene un canal hidrofílico de 2-3 nm a través del cual los dominios pilina plegados se translocan (Li et al., 2004; Saulino et al., 2000; Thanassi et al., 1998b). FimD posee tres dominios proteicos diferentes; un dominio N-terminal periplásmico, un dominio central insertado en la ME y un dominio periplásmico C-terminal. El dominio N-terminal periplásmico (FimDN) es soluble y

comprende los residuos 1-135. Este dominio ha demostrado ser el sitio inicial para el reconocimiento de los complejos binaros pilina-FimC (Ng et al., 2004; Nishiyama et al., 2003; Nishiyama et al., 2005). Datos estructurales y bioquímicos indican que el dominio FimDN no une el dominio N-FimH

(Nishiyama et al., 2003; Nishiyama et al., 2005). De acuerdo con nuestros resultados deben existir regiones diferentes al dominio FimDN que

interaccionen con el dominio N-FimH. La predicción estructural del dominio central de FimD muestra que está compuesto por hojas β anfipáticas (~20-26), insertadas en la ME formando un barril β con un canal hidrofílico central (Henderson et al., 2004; Koebnik et al., 2000). Además, los últimos 150 aminoácidos de FimD podrían formar un segundo dominio periplásmico soluble que parece participar como un segundo sitio en el reconocimiento del complejo pilina-FimC y en los siguientes pasos del ensamblaje de fimbrias (So y Thanassi, 2006; Thanassi et al., 2002). Debido a la forma en L de la proteína FimH se ha sugerido que el dominio N-terminal de FimH podría insertarse en el canal hidrofílico de FimD (Barnhart et al., 2003) donde el dominio pilina unido a

FimC contactaría con los dominios periplásmicos de FimD. Esta hipótesis es compatible con nuestros resultados, de acuerdo a los cuales proponemos un modelo de interacción de FimH con el usher FimD en el que mientras el dominio C-FimH en complejo con la chaperona FimC estaría interaccionando con el dominio FimDN, el dominio N-FimH a través de bucles expuestos en su

superficie contactaría con regiones adicionales de FimD induciendo además la activación de FimD en la que estarían implicados determinados residuos de la zona 2 de N-FimH, que activaría la polimerización de la fimbria. Este modelo se resume en la Figura 47.

FIGURA 47. Modelo de ensamblaje de FimH en fimbrias tipo 1. El usher FimD contiene sitios N-terminal

(N) y C-terminal (C) para la interacción con los complejos chaperona-subunidad. La interacción del complejo C-FimH/FimC se produce en el dominio N-terminal de FimD mientras que la interacción de N- FimH se produce en una región diferente de FimD. Esta interacción es necesaria para producir la activación de FimD.

1. Hemos desarrollado un sistema de expresión de fimbrias tipo 1 en E. coli compatible con phage display en el que el dominio N-terminal de FimH puede ser reemplazado por variantes recombinantes o por dominios tipo Ig. Este sistema de expresión ha sido validado mediante ensayos de agregación de células de levadura, hemaglutinación, purificación de fimbrias, Western blot y ELISA.

2. El dominio N-FimH puede ser presentado en la cápsida del bacteriófago M13 de forma funcional.

3. Existen regiones permisivas a la mutagénesis dentro del dominio N- FimH que toleran modificaciones en su secuencia. La secuencia de N- FimH fue aleatorizada mediante mutagénesis dirigida para la construcción de una genoteca de ~7x108 clones de adhesinas

recombinantes presentadas en la cápsida del bacteriófago M13. Algunas de las adhesinas recombinantes generadas presentan capacidad de translocación y ensamblaje en la fimbria.

4. Variantes quiméricas de FimH en las que el dominio N-FimH fue delecionado o reemplazado por dominios Ig heterólogos no se asociaron a FimD in vivo y consiguientemente no se ensamblaron en la fimbria. Por el contrario, variantes quiméricas de FimH en que un dominio Ig se fusionó a la proteína FimH completa se unieron a FimD in vivo y se ensamblaron en la fimbria aunque a niveles reducidos respecto a FimH silvestre.

5. El dominio N-terminal de FimH es fundamental para la translocación de FimH a través de la membrana externa y su posterior ensamblaje en la fimbria. Esta función depende de la interacción de N-FimH con FimD y de la posterior activación de éste.

6. Los residuos implicados en la interacción de FimH con el usher FimD y en la activación de éste se localizan en bucles expuestos en la superficie del dominio N-FimH cerca del bolsillo de unión a D-manosa y están conservados entre diferentes especies de E. coli. Los residuos G14, G15 y G16 participan en la interacción de N-FimH con FimD mientras que los residuos H45, N46 y D47 participan en la activación de éste.

Abraham, J.M., Freitag, C.S., Clements, J.R., y Eisenstein, B.I. (1985) An invertible element of DNA controls phase variation of type 1 fimbriae of Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci U S A 82: 5724-5727.

Abraham, S.N., Sun, D., Dale, J.B., y Beachey, E.H. (1988) Conservation of the D-mannose- adhesion protein among type 1 fimbriated members of the family Enterobacteriaceae. Nature 336: 682-684.

Adey, N.B., Sparks, A. B., Beasley, J.and Kay, B. K. (1996) Construction of random peptide libraries in bacteriophage M13. In Phage display of peptides and proteins. Kay, B.K., Winter, J. and McCafferty. J. eds. Academic Press, Inc., San Diego, California: 67-78. Armstrong, N., Adey, N. B., McConnell, S. J.and Kay, B. K. (1996) Vectors for phage display.

In Phage display of peptides and proteins.Kay, B.K., Winter, J. and McCafferty J. eds. Academic Press, Inc., San Diego, California, pp: 35-53.

Ausubel, F.M., Brent, R., Kingston, R.E., Moore, D.D., Seidman, J.G., Smith, J.A., and Struhl, K. (1997) Short Protocols in Molecular Biology. New York: John Wiley & Sons, Inc. Azriel-Rosenfeld, R., Valensi, M., y Benhar, I. (2004) A human synthetic combinatorial library of

arrayable single-chain antibodies based on shuffling in vivo formed CDRs into general framework regions. J Mol Biol 335: 177-192.

Backert, S., y Meyer, T.F. (2006) Type IV secretion systems and their effectors in bacterial pathogenesis. Curr Opin Microbiol 9: 207-217.

Bakker, D., van Zijderveld, F.G., van der Veen, S., Oudega, B., y de Graaf, F.K. (1990) K88 fimbriae as carriers of heterologous antigenic determinants. Microb Pathog 8: 343-352. Baorto, D.M., Gao, Z., Malaviya, R., Dustin, M.L., van der Merwe, A., Lublin, D.M., y Abraham, S.N. (1997) Survival of FimH-expressing enterobacteria in macrophages relies on glycolipid traffic. Nature 389: 636-639.

Barnhart, M.M., Pinkner, J.S., Soto, G.E., Sauer, F.G., Langermann, S., Waksman, G., Frieden, C., y Hultgren, S.J. (2000) PapD-like chaperones provide the missing information for folding of pilin proteins. Proc Natl Acad Sci U S A 97: 7709-7714.

Barnhart, M.M., Sauer, F.G., Pinkner, J.S., y Hultgren, S.J. (2003) Chaperone-subunit-usher interactions required for donor strand exchange during bacterial pilus assembly. J Bacteriol 185: 2723-2730.

Baron, C., D, O.C., y Lanka, E. (2002) Bacterial secrets of secretion: EuroConference on the biology of type IV secretion processes. Mol Microbiol 43: 1359-1365.

Better, M., Chang, C.P., Robinson, R.R., y Horwitz, A.H. (1988) Escherichia coli secretion of an active chimeric antibody fragment. Science 240: 1041-1043.

Binet, R., Letoffe, S., Ghigo, J.M., Delepelaire, P., y Wandersman, C. (1997) Protein secretion by gram-negative bacterial ABC exporters. Folia Microbiol (Praha) 42: 179-183.

Binz, H.K., Kohl, A., Plückthun, A., y Grütter, M.G. (2006) Crystal structure of a consensus- designed ankyrin repeat protein: implications for stability. Proteins 65: 280-284.

Bird, R.E., y Walker, B.W. (1991) Single chain antibody variable regions. Trends Biotechnol 9: 132-137.

Blomfield, I.C., McClain, M.S., y Eisenstein, B.I. (1991) Type 1 fimbriae mutants of Escherichia

coli K12: characterization of recognized afimbriate strains and construction of new fim

deletion mutants. Mol Microbiol 5: 1439-1445.

Bos, M.P., y Tommassen, J. (2004) Biogenesis of the Gram-negative bacterial outer membrane. Curr Opin Microbiol 7: 610-616.

Bouckaert, J., Mackenzie, J., de Paz, J.L., Chipwaza, B., Choudhury, D., Zavialov, A., Mannerstedt, K., Anderson, J., Pierard, D., Wyns, L., Seeberger, P.H., Oscarson, S., De Greve, H., y Knight, S.D. (2006) The affinity of the FimH fimbrial adhesin is receptor- driven and quasi-independent of Escherichia coli pathotypes. Mol Microbiol 61: 1556- 1568.

Buchanan, S.K. (2001) Type I secretion and multidrug efflux: transport through the TolC channel-tunnel. Trends Biochem Sci 26: 3-6.

Bullitt, E., y Makowski, L. (1995) Structural polymorphism of bacterial adhesion pili. Nature 373: 164-167.

Bullitt, E., Jones, C.H., Striker, R., Soto, G., Jacob-Dubuisson, F., Pinkner, J., Wick, M.J., Makowski, L., y Hultgren, S.J. (1996) Development of pilus organelle subassemblies in vitro depends on chaperone uncapping of a beta zipper. Proc Natl Acad Sci U S A 93: 12890-12895.

Burrows, L.L. (2005) Weapons of mass retraction. Mol Microbiol 57: 878-888.

Chakraborty, K., Durani, V., Miranda, E.R., Citron, M., Liang, X., Schleif, W., Joyce, J.G., y Varadarajan, R. (2006) Design of immunogens that present the crown of the HIV-1 V3 loop in a conformation competent to generate 447-52D like antibodies. Biochem J. Chen, L., Li, C.M., y Nester, E.W. (2000) Transferred DNA (T-DNA)-associated proteins of

Agrobacterium tumefaciens are exported independently of virB. Proc Natl Acad Sci U

S A 97: 7545-7550.

Choudhury, D., Thompson, A., Stojanoff, V., Langermann, S., Pinkner, J., Hultgren, S.J., y Knight, S.D. (1999) X-ray structure of the FimC-FimH chaperone-adhesin complex from uropathogenic Escherichia coli. Science 285: 1061-1066.

Christie, P.J., y Vogel, J.P. (2000) Bacterial type IV secretion: conjugation systems adapted to deliver effector molecules to host cells. Trends Microbiol 8: 354-360.

Christie, P.J. (2001) Type IV secretion: intercellular transfer of macromolecules by systems ancestrally related to conjugation machines. Mol Microbiol 40: 294-305.

Christie, P.J. (2004) Type IV secretion: the Agrobacterium VirB/D4 and related conjugation systems. Biochim Biophys Acta 1694: 219-234.

Clegg, S., y Gerlach, G.F. (1987) Enterobacterial fimbriae. J Bacteriol 169: 934-938.

Connell, I., Agace, W., Klemm, P., Schembri, M., Marild, S., y Svanborg, C. (1996) Type 1 fimbrial expression enhances Escherichia coli virulence for the urinary tract. Proc Natl Acad Sci U S A 93: 9827-9832.

Conrath, K.E., Wernery, U., Muyldermans, S., y Nguyen, V.K. (2003) Emergence and evolution of functional heavy-chain antibodies in Camelidae. Dev Comp Immunol 27: 87-103.

Craig, L., Pique, M.E., y Tainer, J.A. (2004) Type IV pilus structure and bacterial pathogenicity. Nat Rev Microbiol 2: 363-378.

de Lorenzo, V., Eltis, L., Kessler, B., y Timmis, K.N. (1993) Analysis of Pseudomonas gene products using lacIq/Ptrp-lac plasmids and transposons that confer conditional phenotypes. Gene 123: 17-24.

Derman, A.I., Prinz, W.A., Belin, D., y Beckwith, J. (1993) Mutations that allow disulfide bond formation in the cytoplasm of Escherichia coli. Science 262: 1744-1747.

Dinges, M.M., Orwin, P.M., y Schlievert, P.M. (2000) Exotoxins of Staphylococcus aureus. Clin Microbiol Rev 13: 16-34, table of contents.

Dodson, K.W., Jacob-Dubuisson, F., Striker, R.T., y Hultgren, S.J. (1993) Outer-membrane PapC molecular usher discriminately recognizes periplasmic chaperone-pilus subunit complexes. Proc Natl Acad Sci U S A 90: 3670-3674.

Dodson, K.W., Pinkner, J.S., Rose, T., Magnusson, G., Hultgren, S.J., y Waksman, G. (2001) Structural basis of the interaction of the pyelonephritic E. coli adhesin to its human kidney receptor. Cell 105: 733-743.

Doorbar, J., y Winter, G. (1994) Isolation of a peptide antagonist to the thrombin receptor using phage display. J Mol Biol 244: 361-369.

Dumoulin, M., Conrath, K., Van Meirhaeghe, A., Meersman, F., Heremans, K., Frenken, L.G., Muyldermans, S., Wyns, L., y Matagne, A. (2002) Single-domain antibody fragments with high conformational stability. Protein Sci 11: 500-515.

Duncan, M.J., Mann, E.L., Cohen, M.S., Ofek, I., Sharon, N., y Abraham, S.N. (2005) The distinct binding specificities exhibited by enterobacterial type 1 fimbriae are determined by their fimbrial shafts. J Biol Chem 280: 37707-37716.

Duong, F., Eichler, J., Price, A., Leonard, M.R., y Wickner, W. (1997) Biogenesis of the gram- negative bacterial envelope. Cell 91: 567-573.

Edwards, R.A., y Puente, J.L. (1998) Fimbrial expression in enteric bacteria: a critical step in intestinal pathogenesis. Trends Microbiol 6: 282-287.

Fernández, L.A., y Berenguer, J. (2000) Secretion and assembly of regular surface structures in Gram-negative bacteria. FEMS Microbiol Rev 24: 21-44.

Fernández, L.A., Sola, I., Enjuanes, L., y de Lorenzo, V. (2000) Specific secretion of active single-chain Fv antibodies into the supernatants of Escherichia coli cultures by use of the hemolysin system. Appl Environ Microbiol 66: 5024-5029.

Fernández, L.A. (2004) Prokaryotic expression of antibodies and affibodies. Curr Opin Biotechnol 15: 364-373.

Finlay, B.B., y Falkow, S. (1997) Common themes in microbial pathogenicity revisited. Microbiol Mol Biol Rev 61: 136-169.

Francisco, J.A., Earhart, C.F., y Georgiou, G. (1992) Transport and anchoring of beta- lactamase to the external surface of Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci U S A 89: 2713-2717.

Francisco, J.A., Campbell, R., Iverson, B.L., y Georgiou, G. (1993a) Production and fluorescence-activated cell sorting of Escherichia coli expressing a functional antibody fragment on the external surface. Proc Natl Acad Sci U S A 90: 10444-10448.

Francisco, J.A., Stathopoulos, C., Warren, R.A., Kilburn, D.G., y Georgiou, G. (1993b) Specific adhesion and hydrolysis of cellulose by intact Escherichia coli expressing surface anchored cellulase or cellulose binding domains. Biotechnology (N Y) 11: 491-495. Gally, D. L., Leathart, J., Blomfield, I. C. (1996) Interaction of FimB and FimE with the fim

switch that controls the phase variation of type 1 fimbriae in Escherichia coli K-12. Mol Microbiol 21: 725-38.

Ghosh, P. (2004) Process of protein transport by the type III secretion system. Microbiol Mol Biol Rev 68: 771-795.

Glaser, P., Sakamoto, H., Bellalou, J., Ullmann, A., y Danchin, A. (1988) Secretion of cyclolysin, the calmodulin-sensitive adenylate cyclase-haemolysin bifunctional protein of Bordetella pertussis. Embo J 7: 3997-4004.

Gong, M., y Makowski, L. (1992) Helical structure of P pili from Escherichia coli. Evidence from X-ray fiber diffraction and scanning transmission electron microscopy. J Mol Biol 228: 735-742.

Griffiths, A.D., y Duncan, A.R. (1998) Strategies for selection of antibodies by phage display. Curr Opin Biotechnol 9: 102-108.

Grodberg, J., y Dunn, J.J. (1988) ompT encodes the Escherichia coli outer membrane protease that cleaves T7 RNA polymerase during purification. J Bacteriol 170: 1245-1253. Guyer, M.S., Reed, R.R., Steitz, J.A., y Low, K.B. (1981) Identification of a sex-factor-affinity

site in E. coli as gamma delta. Cold Spring Harb Symp Quant Biol 45 Pt 1: 135-140. Guzman, L.M., Belin, D., Carson, M.J., y Beckwith, J. (1995) Tight regulation, modulation, and

high-level expression by vectors containing the arabinose PBAD promoter. J Bacteriol 177: 4121-4130.

Hahn, E., Wild, P., Hermanns, U., Sebbel, P., Glockshuber, R., Haner, M., Taschner, N., Burkhard, P., Aebi, U., y Muller, S.A. (2002) Exploring the 3D molecular architecture of

Escherichia coli type 1 pili. J Mol Biol 323: 845-857.

Hamers-Casterman, C., Atarhouch, T., Muyldermans, S., Robinson, G., Hamers, C., Songa, E.B., Bendahman, N., y Hamers, R. (1993) Naturally occurring antibodies devoid of light chains. Nature 363: 446-448.

Hanahan, D. (1983) Studies on transformation of Escherichia coli with plasmids. J Mol Biol 166: 557-580.

Hanson, M.S., y Brinton, C.C., Jr. (1988) Identification and characterization of E. coli type-1 pilus tip adhesion protein. Nature 332: 265-268.

Harrison, J.L., Williams, S.C., Winter, G., y Nissim, A. (1996) Screening of phage antibody libraries. Methods Enzymol 267: 83-109.

Henderson, I.R., Navarro-Garcia, F., y Nataro, J.P. (1998) The great escape: structure and function of the autotransporter proteins. Trends Microbiol 6: 370-378.

Henderson, N.S., So, S.S., Martin, C., Kulkarni, R., y Thanassi, D.G. (2004) Topology of the outer membrane usher PapC determined by site-directed fluorescence labeling. J Biol Chem 279: 53747-53754.

Ho, K.L., Yusoff, K., Seow, H.F., y Tan, W.S. (2003) Selection of high affinity ligands to hepatitis B core antigen from a phage-displayed cyclic peptide library. J Med Virol 69: 27-32. Holliger, P., y Hudson, P.J. (2005) Engineered antibody fragments and the rise of single

domains. Nat Biotechnol 23: 1126-1136.

Holmgren, A., y Branden, C.I. (1989) Crystal structure of chaperone protein PapD reveals an immunoglobulin fold. Nature 342: 248-251.

Hoogenboom, H.R. (1997) Designing and optimizing library selection strategies for generating high-affinity antibodies. Trends Biotechnol 15: 62-70.

Hoogenboom, H.R., de Bruine, A.P., Hufton, S.E., Hoet, R.M., Arends, J.W., y Roovers, R.C. (1998) Antibody phage display technology and its applications. Immunotechnology 4: 1-20.

Hoschutzky, H., Lottspeich, F., y Jann, K. (1989) Isolation and characterization of the alpha- galactosyl-1,4-beta-galactosyl-specific adhesin (P adhesin) from fimbriated

Escherichia coli. Infect Immun 57: 76-81.

Hueck, C.J. (1998) Type III protein secretion systems in bacterial pathogens of animals and plants. Microbiol Mol Biol Rev 62: 379-433.

Hughes, K.T., Gillen, K.L., Semon, M.J., y Karlinsey, J.E. (1993) Sensing structural intermediates in bacterial flagellar assembly by export of a negative regulator. Science 262: 1277-1280.

Hull, R.A., Gill, R.E., Hsu, P., Minshew, B.H., y Falkow, S. (1981) Construction and expression of recombinant plasmids encoding type 1 or D-mannose-resistant pili from a urinary tract infection Escherichia coli isolate. Infect Immun 33: 933-938.

Hull, R.A.a.H., S.I. (1994) Adherence mechanisms in urinary tract infections. In: Molecular Genetics of Bacterial Pathogenesis (Miller, V.L., et al., Eds.), ASM Press, Washington, DC..

Hultgren, S.J., Porter, T.N., Schaeffer, A.J., y Duncan, J.L. (1985) Role of type 1 pili and effects of phase variation on lower urinary tract infections produced by Escherichia coli. Infect Immun 50: 370-377.

Hultgren, S.J., Schwan, W.R., Schaeffer, A.J., y Duncan, J.L. (1986) Regulation of production of type 1 pili among urinary tract isolates of Escherichia coli. Infect Immun 54: 613-620. Hultgren, S.J., Lindberg, F., Magnusson, G., Kihlberg, J., Tennent, J.M., y Normark, S. (1989) The PapG adhesin of uropathogenic Escherichia coli contains separate regions for receptor binding and for the incorporation into the pilus. Proc Natl Acad Sci U S A 86: 4357-4361.

Hultgren, S.J. (2001) Uropathogenic Escherichia coli: interactions with bladder epithelium. Urology 57: 105-106.

Hultgren, S.J., Jones, C.H. and Normark, S. (1996) Bacterial adhesins and their assembly. In:

Escherichia coli and Salmonella: Cellular and Molecular Biology (Neidhardts, F.C., Ed.)

Hung, C.S., Bouckaert, J., Hung, D., Pinkner, J., Widberg, C., DeFusco, A., Auguste, C.G., Strouse, R., Langermann, S., Waksman, G., y Hultgren, S.J. (2002) Structural basis of tropism of Escherichia coli to the bladder during urinary tract infection. Mol Microbiol 44: 903-915.

Hung, D.L., Pinkner, J.S., Knight, S.D., y Hultgren, S.J. (1999) Structural basis of chaperone self-capping in P pilus biogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A 96: 8178-8183.

Hynonen, U., Westerlund-Wikstrom, B., Palva, A., y Korhonen, T.K. (2002) Identification by flagellum display of an epithelial cell- and fibronectin-binding function in the SlpA surface protein of Lactobacillus brevis. J Bacteriol 184: 3360-3367.

Isaac, D.D., Pinkner, J.S., Hultgren, S.J., y Silhavy, T.J. (2005) The extracytoplasmic adaptor protein CpxP is degraded with substrate by DegP. Proc Natl Acad Sci U S A 102: 17775-17779.

Izadi-Pruneyre, N., Huche, F., Lukat-Rodgers, G.S., Lecroisey, A., Gilli, R., Rodgers, K.R., Wandersman, C., y Delepelaire, P. (2006) The heme transfer from the soluble HasA hemophore to its membrane-bound receptor HasR is driven by protein-protein interaction from a high to a lower affinity binding site. J Biol Chem 281: 25541-25550. Jacob-Dubuisson, F., Striker, R., y Hultgren, S.J. (1994) Chaperone-assisted self-assembly of

pili independent of cellular energy. J Biol Chem 269: 12447-12455.

Jennings, P.A., Bills, M.M., Irving, D.O., y Mattick, J.S. (1989) Fimbriae of Bacteroides

nodosus: protein engineering of the structural subunit for the production of an

exogenous peptide. Protein Eng 2: 365-369.

Jones, C.H., Pinkner, J.S., Roth, R., Heuser, J., Nicholes, A.V., Abraham, S.N., y Hultgren, S.J. (1995) FimH adhesin of type 1 pili is assembled into a fibrillar tip structure in the

Enterobacteriaceae. Proc Natl Acad Sci U S A 92: 2081-2085.

Jones, C.H., Danese, P.N., Pinkner, J.S., Silhavy, T.J., y Hultgren, S.J. (1997) The chaperone- assisted membrane release and folding pathway is sensed by two signal transduction systems. Embo J 16: 6394-6406.

Jose, J., Bernhardt, R., y Hannemann, F. (2002) Cellular surface display of dimeric Adx and whole cell P450-mediated steroid synthesis on E. coli. J Biotechnol 95: 257-268. Journet, L., Hughes, K.T., y Cornelis, G.R. (2005) Type III secretion: a secretory pathway

serving both motility and virulence (review). Mol Membr Biol 22: 41-50.

Kjaergaard, K., Sorensen, J.K., Schembri, M.A., y Klemm, P. (2000) Sequestration of zinc oxide by fimbrial designer chelators. Appl Environ Microbiol 66: 10-14.

Kjaergaard, K., Schembri, M.A., y Klemm, P. (2001) Novel Zn(2+)-chelating peptides selected from a fimbria-displayed random peptide library. Appl Environ Microbiol 67: 5467- 5473.

Kjaergaard, K., Hasman, H., Schembri, M.A., y Klemm, P. (2002) Antigen 43-mediated autotransporter display, a versatile bacterial cell surface presentation system. J Bacteriol 184: 4197-4204.

Klemm, P. (1986) Two regulatory fim genes, fimB and fimE, control the phase variation of type 1 fimbriae in Escherichia coli. Embo J 5: 1389-1393.

Klemm, P., y Schembri, M.A. (2000) Bacterial adhesins: function and structure. Int J Med Microbiol 290: 27-35.

Knight, S.D., Choudhury, D., Hultgren, S., Pinkner, J., Stojanoff, V., y Thompson, A. (2002) Structure of the S pilus periplasmic chaperone SfaE at 2.2 A resolution. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr 58: 1016-1022.

Koebnik, R., Locher, K.P., y Van Gelder, P. (2000) Structure and function of bacterial outer membrane proteins: barrels in a nutshell. Mol Microbiol 37: 239-253.

Kohl, A., Binz, H.K., Forrer, P., Stumpp, M.T., Plückthun, A., y Grütter, M.G. (2003) Designed to be stable: crystal structure of a consensus ankyrin repeat protein. Proc Natl Acad Sci U S A 100: 1700-1705.

Koronakis, V., Koronakis, E., y Hughes, C. (1989) Isolation and analysis of the C-terminal signal directing export of Escherichia coli hemolysin protein across both bacterial membranes. Embo J 8: 595-605.

Kostakioti, M., Newman, C.L., Thanassi, D.G., y Stathopoulos, C. (2005) Mechanisms of protein export across the bacterial outer membrane. J Bacteriol 187: 4306-4314. Koster, M., Bitter, W., y Tommassen, J. (2000) Protein secretion mechanisms in Gram-negative

bacteria. Int J Med Microbiol 290: 325-331.

Kuehn, M.J., Normark, S., y Hultgren, S.J. (1991) Immunoglobulin-like PapD chaperone caps and uncaps interactive surfaces of nascently translocated pilus subunits. Proc Natl Acad Sci U S A 88: 10586-10590.

Kuehn, M.J., Heuser, J., Normark, S., y Hultgren, S.J. (1992) P pili in uropathogenic E. coli are composite fibres with distinct fibrillar adhesive tips. Nature 356: 252-255.

Kuehn, M.J., Ogg, D.J., Kihlberg, J., Slonim, L.N., Flemmer, K., Bergfors, T., y Hultgren, S.J. (1993) Structural basis of pilus subunit recognition by the PapD chaperone. Science 262: 1234-1241.

Kuehn, M.J., Jacob-Dubuisson, F., Dodson, K., Slonim, L., Striker, R., y Hultgren, S.J. (1994) Genetic, biochemical, and structural studies of biogenesis of adhesive pili in bacteria. Methods Enzymol 236: 282-306.

Langermann, S. (1996) New approaches to mucosal immunization. Semin Gastrointest Dis 7: 12-18.

LaVallie, E.R., DiBlasio, E.A., Kovacic, S., Grant, K.L., Schendel, P.F., y McCoy, J.M. (1993) A thioredoxin gene fusion expression system that circumvents inclusion body formation in the E. coli cytoplasm. Biotechnology (N Y) 11: 187-193.

Lee, S.Y., Choi, J.H., y Xu, Z. (2003) Microbial cell-surface display. Trends Biotechnol 21: 45- 52.

Lee, V.T., y Schneewind, O. (2001) Protein secretion and the pathogenesis of bacterial infections. Genes Dev 15: 1725-1752.

Lee, Y.M., DiGiuseppe, P.A., Silhavy, T.J., y Hultgren, S.J. (2004) P pilus assembly motif necessary for activation of the CpxRA pathway by PapE in Escherichia coli. J Bacteriol 186: 4326-4337.

Li, H., Qian, L., Chen, Z., Thibault, D., Liu, G., Liu, T., y Thanassi, D.G. (2004) The outer

Related documents