El riego se realizó por goteo a cada planta mediante dos emisores colocado sobre cada uno de los dos compartimentos con raíz en las plantas bajo SPR y dos emisores en las plantas con el sistema radical completo (testigo); los emisores se
colocaron cerca del tallo con un gasto de 4 y 8 L h-1 para plantas bajo SPR y testigo,
respectivamente. Al inicio, las plantas en ambos sustratos se regaron a capacidad de campo, para permitir el establecimiento de las raíces.
4.7.2.1 Riego y fertilización de las plantas en el sustrato de tezontle
Diez días después del trasplante y hasta un día antes de iniciar los tratamientos (44 ddt), las plantas se regaron con la solución nutritiva de Steiner (1984) a un potencial osmótico de -0.036 MPa. A partir del inicio de los tratamientos (28 de mayo) y hasta el fin del experimento (12 de julio), las plantas se regaron con la solución nutritiva de Steiner (1984) con un potencial osmótico de -0.072 MPa aplicada continuamente con el agua de riego (Cuadro 4.2 y Figura 4.10).
4.7.2.2 Riego y fertilización de las plantas en el sustrato de composta
Para el riego de las plantas crecidas en composta se instaló un sistema de riego (Figura
4.10) separado al utilizado para el riego de las plantas crecidas en tezontle, ya que las plantas en el sustrato inerte (tezontle) se regaron durante todo el periodo
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experimental con solución nutritiva; mientras que, las plantas en composta se regaron inicialmente con agua acidulada por poseer los nutrimentos necesarios para el crecimiento temprano de las plantas de pimiento morrón. A los 76 ddt (29 de junio) se empezó a suministrar solución nutritiva a un potencial osmótico de -0.036 MPa, debido ha que el suministro de nutrimentos contenidos en la composta fue menor a la demanda del cultivo. Lo anterior se sustenta por los síntomas de deficiencias nutrimentales presentes en las hojas de las plantas bajo estudio (Figura 4.11).
Figura 4.11. Síntomas de deficiencias nutrimentales en plantas crecidas en composta La solución nutritiva se preparó con fertilizantes comerciales constituidos por:
Ca(NO3)2.4H2O, KNO3, MgSO4.7H2O, K2SO4, H3PO4 y H2SO4, ajustándose el pH a
5.5. En la solución, las concentraciones de los micronutrimentos (mg L-1) fueron de:
Fe2+ (2.0); B (0.6); Mn2+ (2.3); Zn2+ (0.6) y Cu2+ (0.06).
Cuadro 4.2. Composición química de la solución nutritiva Steiner (1984)
Solución nutritiva Ca2+ K+ Mg2+ NO3- H2PO4- SO42- PO*
me L-1
Steiner 9 7 4 12 1 7 -0.072
*PO. Potencial osmótico (MPa)
4.7.3 Prácticas culturales
Las plantas durante el crecimiento se dirigieron a dos tallos y se realizaron podas de hojas senescentes y yemas vegetativas axilares cada 8 d para mantenerlas en óptimas condiciones.
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Al inicio del amarre del primer fruto las plantas fueron sostenidas con hilo rafia atado a alambres colocados en la parte superior y a lo largo de la hilera de plantas. Desde la antesis de las primeras flores (03 de mayo del 2010), las plantas se movieron para favorecer la polinización aproximadamente a las 13:00 h de cada día. La prevención y/o control de plagas y enfermedades (como gusanos del fruto, mosquita blanca, pudriciones radicales y cenicilla) se realizó aplicando aspersiones de productos químicos (Cuadro 4.3); algunos aplicados a través del sistema de riego
por goteo. Además de aspersiones semanales del fertilizante foliar
BAYFOLANFORTE a una dosis de 2 mL L-1 de agua.
Cuadro 4.3. Calendario de aplicación de fungicidas e insecticidas y control de malezas en el cultivo de pimiento morrón
Problema Producto Dosis
(L ó kg ha-1)
Días al trasplante Nombre comercial Nombre químico
Enfermedad Damping off (Fusarium spp., Phythium spp., Phytophthora spp. y Sclerotium spp.) PREVICUR 72.2 % propamocarb HCL 0.45-0.60 1, 26, 58
COBREZATE 200 oxicloruro de cobre 0.50-1.00 26, 43
Tizones
(Phytophthora infestans, Alternaria solani)
RIDOMIL GOLD
BRAVO 76.5 PH metalaxil + clorotalonil 0.75-1.00 51, 63, 72
Cenicilla (Leveillulla taurica-Oidiopsis spp.) BAYLETON 25% WP triadimefon 0.20-0.40 43 BENOMYL 50% WP benomil 0.50-1.00 63, 72 AMISTAR 50 WG azoxystrobin 0.20-0.40 78 Plaga
Gusano del fruto
(Spodoptera spp.,
Heliothis spp.)
KARATE ZEON 5 % lambdacihalotrina 0.15-0.20 30, 63
mosquita blanca
(Bemisia tabaci) PLENUM
50 GS pymetrozine 0.20-0.40 30
Control de malezas 10, 19, 40
Nota: el control de malezas sólo se realizó en los recipientes con composta como sustrato
4.8 Factores ambientales
Las variables ambientales que se registraron con un sistema automatizado
HOBOwarePro (Onset Computer Corporation, Data Loggers Devices) a partir de
iniciados los tratamientos (28 de mayo) hasta el fin del experimento (13 de julio), fueron la temperatura del ambiente (ºC) y la humedad relativa (%), las cuales se
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midieron dentro del invernadero cada hora. Con los valores de la humedad relativa y la temperatura del ambiente se calculó el déficit de presión de vapor (DPV).
4.9 Variables a evaluar
Para cumplir con los objetivos planteados, se evaluaron las siguientes variables:
4.9.1Relaciones hídricas
El potencial de agua total de la hoja (hoja) se determinó en la hoja más joven
y completamente expandida de cuatro plantas por tratamiento, con una bomba de presión tipo Scholander (Soil Moisture Equipment Corp., Santa Bárbara, California, USA). Para ello la hoja se separó de la planta e inmediatamente se introdujo en la cámara de medición de presión, dejando un segmento de peciolo fuera, posteriormente se aplicó lentamente presión neumática, generada con gas nitrógeno, hasta observarse en el corte del peciolo fuera de la cámara, la primera gota de savia de los haces vasculares, indicando el balance de presión. En ese momento se tomó la lectura del manómetro y se expresó en MPa. Las determinaciones se realizaron a los 15, 30 y 45 días después de iniciados los tratamientos (ddit) en dos periodos de tiempo; en ausencia de luz solar (7:00 h) y, entre las 12:00 y 13:00 h.
4.9.2 Intercambio de gases
La tasa de asimilación de CO2 (μmol m-2 s-1) (A), la conductancia estomática
(gs) (mmol m-2 s-1) y la tasa transpiratoria (E) (mmol m-2 s-1) se midieron en 2.5 cm2
de área foliar en la hoja más joven y completamente expandida de cuatro plantas por
tratamiento, entre las 13:00 y 13:30 h, las medidas se realizaron in situ a los 15, 30 y
45 ddit con un sistema abierto y portátil de análisis de gases en el espectro infrarrojo
(CIRAS-1, PP-SYSTEMS). Las lecturas se tomaron cuando el flujo de CO2 era
estable en 360 ppm dentro de la cámara de medición. La temperatura promedio en la cámara de medición durante el primer, segundo y tercer muestreo fue de 25.5, 26.4 y 24.2 ºC, respectivamente. La radiación fotosintéticamente activa varió desde 574 a
839, 573 a 729 y 152 a 384 μmol m-2
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primer, segundo y tercer muestreo, respectivamente. La determinación del intercambio gaseoso se hizo en hojas vecinas a las usadas en la estimación del hoja.
4.9.3 Área foliar, distribución de la materia fresca y seca en hoja, tallo,