Bacteriología Diagnóstica Streptococcus y Enterococcus
especies de Enterococcus crecen a una temperatura óptima de 35oC, pero la mayoría de las especies pueden crecer entre 10°C y 45oC, crecen en caldo tripticasa soya (CTS) conteniendo 6.5% de NaCl e hidrolizan la esculina en presencia de sales biliares. Algunas especies de
Enterococcus son móviles. La expresión de un fenotipo hemolítico es altamente variable entre
las diferentes especies de Enterococcus así como entre cepas de una misma especie. Por ejemplo, algunas cepas de E. faecalis son ß-hemolíticas en medios con sangre de conejo o caballo, pero no hemolíticas en medio con sangre de oveja.
Enterococcus es un grupo de bacterias muy resistentes que pueden sobrevivir en
ambientes muy adversos lo que les permite encontrarse casi en cualquier parte de la naturaleza como en suelo, agua, alimentos, animales, aves e insectos. Diferentes especies de
Enterococcus pueden encontrarse formando parte de la flora normal del tracto gastrointestinal y
tracto genitourinario del ser humano y muchos animales. Las especies clínicamente más importantes son E. faecalis y E. faecium, con frecuencias de aislamiento de infecciones por
Enterococcus de 80-90% y de 10-15%, respectivamente. Estas especies de Enterococcus son
responsables aproximadamente del 10% del total de las infecciones urinarias y del 16% de las infecciones urinarias de origen nosocomial. Adicionalmente, las especies de Enterococcus son importantes en las infecciones intraabdominales o pélvicas y de bacteremias, las cuales se presentan en pacientes inmunocomprometídos o con enfermedad grave que requieren de hospitalización prolongada. La bacteremia puede llevar a endocarditis, en donde la especie E.
faecalis es el agente más común en los casos de endocarditis por Enterococcus. 4. Pruebas bioquímicas de identificación de Streptococcus y Enterococcus Actividad hemolítica.
La hemólisis observada en los aislamientos de Streptococcus y Enterococcus en diferentes muestras clínicas es una de las primeras características sugestivas de posibles especies. Algunas especies muestran una hemólisis completa (hemólisis ß) alrededor de las colonias en agar sangre, como S. pyogenes, S. agalactiae (aunque algunos aislamientos aparecen como no-hemolíticos), Streptococcus de los grupos C, F y G, así como algunas cepas de
Enterococcus, aunque, como se indicó anteriormente, el fenotipo hemolítico en Enterococcus
es muy variable. Otras especies pueden mostrar una hemólisis incompleta (hemólisis alfa) alrededor de las colonias en agar sangre, incluyendo S. pneumoniae, Streptococcus del grupo D y del grupo viridans.
Al realizar la determinación de los patrones hemolíticos de los aislamientos de
Streptococcus y Enterococcus es importante considerar que muchas de sus citolisinas
(hemolisinas) son lábiles al O2, por lo que las bacterias deben ser inoculadas dentro del agar para proporcionar un ambiente relativamente anaeróbico. Asimismo, los patrones hemolíticos varían grandemente dependiendo del tipo de eritrocito que se ha utilizado en la preparación del agar sangre. Particularmente, los patrones hemolíticos utilizados en la identificación de especies de Streptococcus y Enterococcus se han determinado usando eritrocitos ovinos o bovinos, los cuales pueden variar si se utilizan eritrocitos humanos, equinos o de conejo.
Prueba de CAMP (Christie, Atkins, Munch-Petersen).
La prueba de CAMP se utiliza para la identificación presuntiva de S. agalactiae (grupo B de Lancefield). En esta prueba se observa un efecto sinérgico que se produce al interactuar el factor CAMP producido por cepas de S. agalactiae con la hemolisina β de Staphylococcus
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dicho efecto en forma de flecha cuando se utilizan placas de agar sangre preparadas con eritrocitos ovinos o bovinos. Una vez inoculados, los medios de cultivo deben ser incubados a 35-37oC por 18-24 horas. Algunos autores recomiendan no incubar las placas de agar sangre para la prueba de CAMP en una atmósfera enriquecida con CO2 debido a un probable efecto inhibitorio sobre el sinergismo.
Prueba de hidrólisis de esculina.
Esta prueba se utiliza para la identificación presuntiva de Streptococcus del grupo D, como S. bovis y S. equinus, y de las especies de Enterococcus, todos los cuales dan esta prueba positiva. Esta prueba se realiza utilizando un medio llamado agar bilis-esculina, el cual contiene 4% de sales biliares y 1% de esculina. La hidrólisis de la esculina resulta en la formación de glucosa y esculetina. La esculetina en presencia de Fe3+ forma un complejo de color negro. Por lo tanto, las bacterias que crecen en presencia de las sales biliares e hidrolizan esculina tornan el medio de color negro, generalmente en un periodo de incubación de 18-24 horas a 35-37oC. La presencia de crecimiento pero sin la formación del color negro se considera como una prueba negativa.
Prueba de crecimiento (tolerancia) en 6.5% de NaCl.
Esta prueba permite diferenciar las especies de Enterococcus (crecimiento positivo en presencia de 6.5% de NaCl) de los Streptococcus del grupo D (crecimiento negativo en presencia de 6.5% de NaCl). El microorganismo en estudio se inocula en un caldo tripticasa soya conteniendo 6.5% de NaCl. Luego de un periodo de 18-24 horas a 35-370C se observa la presencia o ausencia de crecimiento en el medio de cultivo.
Prueba de resistencia al optochin.
La prueba de resistencia al optochin (hidrocloruro de hidrocupreína) permite la diferenciación de Streptococcus pneumoniae (sensible al optochin) de otros Streptococcus α- hemolíticos como los Streptococcus del grupo viridans (resistentes al optochin). Para la realización de esta prueba el microorganismo en estudio debe ser inoculado densamente en una placa de agar sangre y sobre el inóculo se coloca un disco conteniendo optochin (rotulado con una P), el cual se presiona levemente para que se adhiera a la superficie del medio. Las placas de agar sangre son posteriormente incubados a 35-37oC por un período de 18-24 horas en una atmósfera enriquecida con CO2.
La mayoría de los discos conteniendo optochin disponibles comercialmente tienen un diámetro de 6 mm. Utilizando estos discos de 6 mm para la prueba de resistencia al optochin, un resultado se considera negativo (susceptible) cuando el halo de inhibición mide al menos 14 mm de diámetro. Sin embargo, algunas pocas casas comerciales tienen a disposición discos conteniendo optochin de 10 mm de diámetro. En este caso, un halo de inhibición igual o superior a 16 mm de diámetro se debe interpretar como un resultado negativo (susceptible).
Prueba de resistencia a la bacitracina.
La prueba de resistencia a la bacitracina se utiliza para la diferenciación presuntiva de
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Para realizar esta prueba, el microorganismo en estudio se debe inocular densamente en una placa de agar sangre y sobre el inóculo se coloca un disco conteniendo 0.04 unidades de bacitracina (rotulado con una A), el cual se presiona levemente para que se adhiera a la superficie del medio. Las placas de agar sangre son posteriormente incubados a 35-37oC por un período de 18-24 horas en una atmósfera aerobia no enriquecida con CO2. La presencia de cualquier halo de inhibición se considera como negativo (susceptible), mientras que el crecimiento bacteriano hasta el borde del disco se considera como positivo (resistente).
Cuadro 4. Características preliminares para diferenciar los géneros Streptococcus y Enterococcusa.
Característica Streptococcus Enterococcus
Producción de leucina aminopep tidasa (LAP) + +
Producción de pirrolidonil-arilamidasa (PYR) – +
Hidrólisis de esculina V +
Crecimiento en CTS conteniendo 6.5% NaCl V +
Crecimiento a 10°C – +
Crecimiento a 45°C – +
a ≥ 90% de las cepas dan un resultado positivo;–¸ ≤ 90% de las cepas dan un resultado negativo; V, 11-89% de las cepas dan un resultado positivo.
Cuadro 5. Características diferenciales de Streptococcus de los grupos de Lancefield A (S. pyogenes), B (S.agalactiae), C, F y Ga.
Característica Grupo A Grupo B Grupo C, F y G
Hemólisis β β, ninguna β
Prueba de CAMP con S. aureus – + –
Resistencia a bacitracina (0.04 U) + – V Resistencia a optochin + + + Resistencia a sulfametoxazol-trimetoprim (SXT) – – + Hidrólisis de hipurato – + – Producción de PYR + – – Crecimiento en CTS + 6.5% NaCl – V – Hidrólisis de esculina – – – Solubilidad en bilis – – – a Ver cuadro 4
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Cuadro 6. Características diferenciales de Streptococcus del grupo D de Lancefield y de Enterococcusa.
Característica Streptococcus Grupo D Enterococcus
Hemólisis α, ninguna α, β, ninguna
Prueba de CAMP con S. aureus – –
Resistencia a bacitracina (0.04) + + Resistencia a optochin + + Resistencia a SXT + – Hidrólisis de hipurato – V Producción de PYR – + Crecimiento en CTS + 6.5% NaCl – + Hidrólisis de esculina + + Solubilidad en bilis – – a Ver cuadro 4
Cuadro 7. Características diferenciales de Streptococcus del grupo viridans y de Streptococcus pneumoniae
Característica Streptococcus Grupo viridans S. pneumoniae
Hemólisis α, ninguna α
Prueba de CAMP con S. aureus – –
Resistencia a bacitracina (0.04) V V Resistencia a optochin + – Resistencia a SXT – – Hidrólisis de hipurato V – Producción de PYR – – Crecimiento en CTS + 6.5% NaCl – – Hidrólisis de esculina V – Solubilidad en bilis – + 5. Cronograma de actividades. Día 1
• Entrega de cultivos en placas de agar sangre. • Describir la morfología colonial
• Realizar frotis y tinción de Gram. • Describir la morfología microscópica.
• Realizar la prueba de catalasa utilizando una cepa de S. aureus y una cepa de
Enterococcus como controles positivo y negativo, respectivamente.
• Inocular una placa de agar sangre para evaluar la actividad hemolítica. Para esto, inocular una placa de agar sangre preparada con eritrocitos bovinos o equinos (rotulada como CAMP), y realizar varias hendiduras en el agar, de manera que posteriormente al período de incubación ocurra crecimiento por debajo de la superficie del medio. Inocular una placa
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• Inocular una placa de agar sangre para realizar las pruebas de resistencia a bacitracina y a optochin. Para esto, inocular densamente la placa de agar sangre con la correspondiente bacteria. Colocar un disco conteniendo optochin (marcado con una P de “pneumococccus”) y otro disco conteniendo 0.04 U de bacitracina (marcado con una A) sobre el inóculo, de manera que cada uno de los discos queden colocados hacia una mitad de la placa (ver la siguiente figura). Presionar levemente cada uno de los discos para que se adhieran a la superficie del medio. Incubar a 35-370C por 18-24 horas en una atmósfera enriquecida con CO2.
• Inocular una placa de agar sangre preparada con eritrocitos ovinos o bovinos mediante estría para realizar la prueba de CAMP. Para realizar esta prueba, la placa debe ser inoculada en el centro por estría con una cepa de Staphylococcus aureus productora de la toxina β (esfingomielinasa). Perpendicularmente al inóculo de S. aureus se inocula por estría la especie de Streptococcus o Enterococcus, sin tocar el sitio donde se inoculó la otra bacteria, tal y como se muestra en la siguiente figura. Posteriormente las placas deben ser incubadas a 35-37oC por 18-24 horas.