En áreas cultivables infestadas, la arada profunda durante el proceso de preparación del terreno puede reducir la población de la escoba amarga. En áreas pequeñas de cultivo, la escarda manual durante los estadios tempranos de crecimiento previene la floración. La escarda de plantas ya maduras es inefectivo debido a que la planta puede regenerar a partir de sus yemas de la corona de la planta (Gupta y Sharma 1977).
En India, en áreas muy infestadas, la escoba amarga se ha logrado eliminar a través del uso de plantas de Cassia spp. (Joshi 1991). Esta práctica consiste en el desyerbe manual de la maleza y siembra inmediata de las semillas de
Cassia (C.sericea o C. uniflora Mill.), cuya población se elevó notablemente sobre la de escoba amarga al decursar el tiempo. Dos años después la relación Cassia:Parthenium fue mayor a 21:1 (Mahadevappa y Ramaiah
1990).
El control biológico de la escoba amarga ya se practica en Australia mediante el uso de la polilla perforadora del tallo, Epiblema strenuana (Lepidoptera: Tortricidae). El insecto posee un nivel de reproducción relativamente alto en cortos períodos de tiempo y su efectividad ha sido comprobada en las alturas centrales de Queensland (McFadyen 1985). Hay también otros agentes
biológicos con potencial para el control de la escoba amarga, tales como el crisomélido, Zygogramma bicolorata (Coleoptera: Chrysomelidae) y el picudo taladrador del tallo Listronotus setosípennis (Coleoptera: Curculionidae). Todos estos organismos son originarios del Brasil y México, por lo que requieren evaluación previa en los países afectados por la escoba amarga.
Otro desarrollo, en proceso, en materia de control biológico de la escoba amarga es el uso de un hongo causante de la roya Puccinia abrupta var. partheniicola. Suspensiones de uredosporas de pústulas de 3 semanas de edad se han aplicado sobre el follaje de la escoba amarga, obteniéndose efectividad consistente (Parker 1989). Este hongo está siendo ahora evaluado para el desarrollo de un micoherbicida.
La escoba amarga no es eliminada por algunos conocidos herbicidas, tales como paraquat (Njoroge 1991), trifluralin, difenamida, napropamida y las acetanilidas, alachlor, metolachlor y propachlor (Labrada 1990). Este autor ha observado que en plantaciones de cítricos, café y bananos tratadas
repetidamente con paraquat, la escoba amarga se ha convertido en la maleza predominante en el período de un año. Infestaciones similares han tenido lugar en campos de hortalizas y leguminosas tratadas por varios años con trifluralin. Esta incidencia de aparente resistencia de la escoba amarga a los herbicidas indica la necesidad de utilizar mezclas o secuencias de herbicidas contra la maleza.
Existen algunos tratamientos selectivos de herbicidas efectivos para el control de la escoba amarga (Tabla 1). Su aplicación en áreas de pequeños
agricultores dependerá de varios factores socio-económicos de los lugares afectados.
En algunas situaciones es más útil determinar el umbral económico de la escoba amarga en las áreas de cultivo afectadas, lo cual ayuda a decidir si aplicar o no un tratamiento químico costoso. Este valor de umbral ha sido establecido para varios cultivos (Tabla 2). Si la escoba amarga no es combatida a las densidades indicadas y período de desarrollo de la planta cultivable, sin lugar a dudas, ocurrirán pérdidas de rendimientos y se incrementará el banco de semillas de la maleza en el suelo.
Tabla 1. Herbicidas para el control de Parthenium hysterophorus*
Herbicida kg i.a./ha Tratamiento Cultivo
Ametrina 1.6-2.4 Post Bananos, plátanos, café, cítricos y piña.
Ametrina + simazina 1.6-2.4 (de cada) Pre o post Idem.
Atrazina 2.4-3.2 Pre Maíz y sorgo Prometrina 1.0-1.5 Pre Ajo y papa
2, 4-D 1.0-1.5 Post Maíz, sorgo y pastos.
Metribuzin 0.2-0.35 Pre Siembras directas y trasplante de tomate, papa.
Fomesafen 0.25 Post Frijol, soya. Linuron 0.75-1.0 Pre Frijol, soya y ajo. Metobromuron 0.75-1.0 Pre Frijol, soya y papa. Oxadiazon 0.25-0.38 Post Cebolla.
Tabla 2 Umbral económico de Parthenium hysterophorus en diferentes cultivos*
Cultivo Umbral de Parthenium (plantas/m2)
Período del cultivo (días después de la emergencia o trasplante) Frijol 1 30 Soya 4 15-30 Tomate (siembras) 1 20 Pimiento (trasplante) 1-2 60 Cebolla (trasplante) 2 20 Ajo 1 15
*De acuerdo a Labrada y Morales (1986); Paredes y Labrada (1986); Paredes
et al. (1990).
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