Environmental
Theorising
4.8 Data Analysis
1. Álvarez, Z; Bravo, L; Tagami, R. (2006). Plan de negocios para la industrialización
y exportación de lúcuma de seda. Cuad. Difus. 11 (21): 97-114.
2. Alfonso, A; Noriega, C; Isidrón, M; Andraca, L; Alfonso, D; Rodriguez D. (2016).
Optimización de los protocolos de extracción de ADN y del marcador molecular tipo RAPD en Anonáceas. Cultivos Tropicales 37, 91-98
3. Altamirano, M; Yánez P. (2016). El código de barras de ADN (barcoding): Una herramienta para la investigación y conservación de la diversidad biológica en el Ecuador. La Granja: Revista de Ciencias de la Vida. Vol. 23(1): 5–13. ISSN: 1390- 3799.
4. Amandita, F; Rembold, K; Vornam, B, et al. (2019). DNA barcoding of flowering
plants in Sumatra, Indonesia. Ecol Evol.; 9: 1858–1868.
https://doi.org/10.1002/ece3.4875
5. Ansari, S; Narayanan, C; Wali, SA; Kumar, R.; Shukla, N.; Rahangdale, SK. (2012).
ISSR markers for analysis of molecular diversity and genetic structure of Indian teak (Tectona grandis Lf) populations. Annals of Forest Research, 55 (1): 11-23.
6. Arends, J. (1976). Somatic Chromosome Number of some African Sapotaceae. Acta
Bot. Neerl. 1976; 449 – 457.
7. Arias, R., Martínez-Castillo, J., Sobolev, V. S., Blancarte-Jasso, N. H., Simpson, S.
A., Ballard, et all. (2015). Development of a Large Set of Microsatellite Markers in
Zapote Mamey (Pouteria sapota (Jacq.) H.E. Moore & Stearn) and Their Potential Use in the Study of the Species. Molecules (Basel, Switzerland), 20(6), 11400– 11417. doi:10.3390/molecules200611400
BIBLIOTECA
DE POSGRADO
- UNT
8. Báez, S; Jaramillo, L; Cuesta, F; Donoso, D. (2016) Effects of climate change on
Andean biodiversity: a synthesis of studies published until 2015. Neotropical Biodiversity 2:1, pages 181-194
9. Balzarini, M; Di Rienzo, J. (2016). InfoGen. FCA, Universidad Nacional de
Córdoba, Argentina. Disponible en: www.info-gen.com.ar
10.Becerra, V; Paredes, M. (2000). Uso de marcadores bioquímicos y moleculares en
estudios de diversidad genética. Agricultura Técnica. 60(3), 270-281
11.Blaxter ML. (2004). The Promise of a DNA Taxonomy. Philos Trans R Soc Lond B
Biol Sci;359(1444):669-679.
12.Borbor, M. (2017). Variación morfológica y molecular de la lúcuma (Pouteria
lucuma [R et. Pav] O. Kze) y su contribución al manejo sustentable de los huertos de Yaután y Laredo Tesis para optar por el grado de Doctoris Philosophiae en Agricultura Sustentable. Universidad Nacional Agraria la Molina.
13.Carrara, S. (2004). Genetic Variation Among Cultivated Selections of Mamey
Sapote (Pouteria spp. [Sapotaceae]) Tesis para optar el grado de Master of Science
en Biology. Universidad Internacional de Florida. EEUU.
14.Doyle, J; Doyle, J. (1990). Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus 12: 13–
15.
15.dos Santos, F; Vasconcelos, M; de Almeida, F; dos Santos, C; Cardoso, F; Teixeira
das Chagas, K. (2016). ISSR molecular markers for the study of the genetic diversity of Mimosa caesalpiniaefolia Benth.. Idesia (Arica), 34(3), 47-52. https://dx.doi.org/10.4067/S0718-34292016000300007
16.Eguiarte, L; Souza, V; Aguilar, X. (2007). Ecología Molecular. Editorial
BIBLIOTECA
DE POSGRADO
- UNT
17.Ferreira, M; Grattapaglia, D. (1998). Introdução ao Uso de Marcadores Moleculares
em Análise Genética. Brasília, 1: 121-123.
18.Fraser, C; Alm, E; Polz M; Spratt, BG; Hanage WP.(2009). The Bacterial Species
Challenge: Making Sense of Genetic and Ecological Diversity.
Science.;323(5915):741-746.
19.Fuentealba, C; Gálvez, L; Cobos, A; Olaeta, J; Defilippi, B; Chirinos, R; et. al. (2016). Characterization of main primary and secondary metabolites and in vitro antioxidant and anti-hyperglycemic properties in themeso carp of three biotypes of
Pouteria lucuma. Food Chem.; 190: 403–411.
20.Guasmi, F; Elfalleh, W; Hannachi, H; F`eres, K; Touil, L; Marzougui, N; Triki,T et.
al. (2012). The Use of ISSR and RAPD Markers for Genetic Diversity among South
Tunisian Barley. ISRN Agronomy. Volume, Article ID 952196,
doi:10.5402/2012/952196
21.Guerra, M., Ruiz, R; Pardo, E. (2018). Diversidad genética de Mangifera indica
(Anacardiaceae) en Valencia, Córdoba, Colombia, usando marcadores
microsatélites. Acta Botanica Mexicana 124. DOI:10.21829/abm124.2018.1285
22.Gogoi B., Bhau B. (2018). DNA barcoding of the genus Nepenthes (Pitcher plant):
A preliminary assessment towards its identification. BMC Plant Biology, 18(1), 153 10.1186/s12870-018-1375-5
23.Hall, T. (1999). BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and
analysis program for Windows 95/98/NT. Nucl. Acids. Symp. Ser. 41:95-98. 24.Huamantupa, I. (2008). Frutales Nativos Silvestres consumidos en los mercados
locales y zonas rurales de la Amazonía Peruana (Departamentos de Cusco, Loreto y Madre de Dios). Rev. Q'EUÑ. 1(2): 026 – 031
BIBLIOTECA
DE POSGRADO
- UNT
25.Inga, M; Garcia, J; Aguilar-Galvez, A; Campos, D; Osorio, C. (2019) Chemical
characterization of odour-active volatile compounds during lucuma (Pouteria
lucuma) fruit ripening, CyTA - Journal of Food, 17:1, 494-500, DOI: 10.1080/19476337.2019.1593248
26.Jacobsen, S; Mujica, A; Ortiz, R. (2003). La Importancia de los Cultivos Andinos.
Rev. Vzlana. de Soc. y Ant; 13(36): 14-24.
27.Jadán Guerrero, M., Basantez, K., Gómez-Kosky, R., & Bermudez Caraballoso, I.
(2016). Establecimiento in vitro de brotes de Vasconcellea x helbornii (Badillo)
Badillo. Biotecnología Vegetal, 16(2). Recuperado de
https://revista.ibp.co.cu/index.php/BV/article/view/511
28.Jedrzejczyk, I; Rewers, M. (2018). Genome size and ISSR markers for Mentha L.
(La-miaceae) genetic diversity assessment and species identification. Industrial
Crops and Products, 120:171–179. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2018.04.062
29.Lanteri, A. (2007). Código de Barras de ADN y sus posibles aplicaciones en el campo
de la Entomología. Rev. Soc. Entomol. Argent. 66 (3-4): 15–25.
30.Kim, K; Byrne, L. (2006). Biodiversity loss and the taxo- nomic bottleneck: emerging biodiversity science. Ecological Research. 21: 794–810.
31.Kimura, M. (1980). A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. J. Mol. Evol. 16: 111–120.
32.Kumar, S; Stecher, G; Tamura, K. (2016). MEGA7: Molecular Evolutionary
Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution 33:1870-1874
BIBLIOTECA
DE POSGRADO
- UNT
33.Larkin, M., Blackshields, N; Brown, R; Chenna, P; McGettigan, H; McWilliam, F;
et al. (2007). Clustal W and Clustal X version 2.0. Bioinformatics 23 (21): 2947– 2948.
34.Lavado, M; Yenque, J; Robles, R. (2012). Estudio de rendimiento de harina de lúcuma a partir del fruto fresco. Revista de la Facultad de Ingeniería Industrial. 2012; 15(1): 127-130
35.León, B. (2006). Sapotaceae endémicas del Perú. Rev. peru. biol; 13(2): 608 - 609
36.León, J. (2000). Botánica de cultivos tropicales. 3ª. ed. San José: Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura.
37.Leiva-González, S., Zapata, M., Gayozo, G., Chang, L. & Leiva, M. (2013). Frutas
silvestres con potencial vitamínico de los Andes Centrales de América. Arnaldoa, 20(2), 315-358.
38.Louati, M., Ucarli, C., Arikan, B., Ghada, B., Hannachi, A., Turgut-Kara, N. (2019).
Genetic, Morphological, and Biochemical Diversity of Argan Tree (Argania
spinosa L.) (Sapotaceae) in Tunisia. Plants (Basel, Switzerland), 8(9), 319. doi:10.3390/plants8090319
39.Majourhat, K; Jabbar, Y; Araneda,L; Zeinalabedini, M; Hafidi, A; Martínez-
Gómez,P. (2007). Karyotype characterization of Argania spinosa (L.) Skeel
(Sapotaceae). South African Journal of Botany.; 73: 661–663.
40.Mostacero, J; Mejía, F; Gamarra, E.(2002). Taxonomía de las Fanerógamas útiles del Perú. Trujillo – Perú. Editora Normas Legales S.A.C.
41.Morillo, A; Gómez , L., Ávila, I., Andrade, E., Morillo, Y. (2015). Caracterización
molecular con microsatélites amplificados al azar (RAMs) de Inchi (Caryodendron
orinocense K.). Revista Colombiana de Biotecnología, 17(1), 46-53. doi:https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v17n1.50709
BIBLIOTECA
DE POSGRADO
- UNT
42.Morales, N; Fernández, I; Carrasco, B; Orchard, C. (2015). “Combining Niche
Modelling, Land-Use Change, and Genetic Information to Assess the Conservation Status of Pouteria splendens Populations in Central Chile,” International Journal of
Ecology, vol., Article ID 612194, 12 pages. https://doi.org/10.1155/2015/612194.
43.Nei, M. (1978). Estimation of average heterozygocity and genetic distance from a
small number of individuals. Genetics 89:583-590.
44.Nimbalkar, SD., Jade, SS., Kauthale, VK., Agale, S., Bahulikar, R.A. (2018). Genetic
diversity in the candidate trees of Madhuca indica J. F. Gmel. (Mahua) revealed by inter-simple sequence repeats (ISSRs). 3 Biotech, 8(3), 143. doi:10.1007/s13205- 018-1168-4
45.Okumus I. (2002). Fish Population Genetics and Applications of Molecular Markers
to Fisheries and, Aquaculture: I- Basic Principles of
FishPopulationGenetics.TurkishJournal ofFisheries and AquaticSciences; 2002: 145-155.
46.Padial, JM; De la Riva, I. (2007). Integrative Taxonomists Should Use and Produce
DNA Barcodes. Syst Biol.1586:67-68.
47.Paschoa, Roberta Pena da, Christ, Jheniffer Abeldt, Valente, Cecília Silva, Ferreira,
Marcia Flores da Silva, Miranda, Fábio Demolinari de, Garbin, Mário Luís, & Carrijo, Tatiana Tavares. (2018). Genetic diversity of populations of the dioecious Myrsine coriacea (Primulaceae) in the Atlantic Forest. Acta Botanica Brasilica, 32(3), 376-385. Epub 09 de abril de 2018.https://dx.doi.org/10.1590/0102- 33062017abb0355
48.Paz, A; Gonzalez, M; Crawford, A. (2011). Códigos de barras de la vida:
BIBLIOTECA
DE POSGRADO
- UNT
49.Pérez-Schultheiss, J. (2009). Biodiversidad, Taxonomía y el Valor de los Estudios
Descriptivos. Boletín de Biodiver- sidad de Chile. 1(1): 1–14.
50.Pimm, S; Raven, P. (2000). Extinction by numbers. Nature. 403: 843–845.
51.Puecher, D; Robredo, C; Ríos, R; Rimieri, P. (1998). Evaluación de la variabilidad
por RAPDs en Bromus catharticus Vahl. En: Congreso Argentino de Botánica. Río
Cuarto.
52.Reyes-Alemán, J; Valadez-Moctezuma, E; Simuta-Velázco, L; Barrientos-Priego, A;
Gallegos-Vázquez, C.(2013). Distinción de especies del género Persea mediante RAPD e ISSR de ADN. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas. 4(4): 517-529 53.Rodríguez, N. (1999). Determinación de la tasa de Cruzamiento con Marcadores
Bioquimicos (Isoenzimas) en una Población de Zapote (Pouteria sapota (Jacq.) Moore Stearm) de la parte baja del rio Hato, en San Agustín Acasaguastlan, El Progreso. Tesis para obtener el Título de Ingeniero Agrónomo. Facultad de Agronomía. Universidad de San Carlos de Guatemala.
54.Rodríguez-Rojas, T; Andrade-Rodríguez, M; Alia-Tejacal, I; López-Martínez, V; Espinosa-Zaragoza, S; Esquinca-Avilés, H. (2012). Caracterización molecular de
zapote mamey (Pouteria sapota (Jacq.) Moore & Stearn). Rev. Fac. Agron. (LUZ).;
29: 339-354
55.Rolim, L; Queiroz, M; Fontes, A; Cortopassi, G. (2011). Use of RAPD Molecular
Markers on Differentiation of Brazilian and Chinese Ganoderma lucidum Strains. Braz. Arch. Biol. Technol.; 54 (2): 273-281.
56.Sanchez, A. (2017). Genetic variability study in accessions of papa (Solanum tuberosum L .) mediante marcadores SSRs. Rev. Cien. Agri, 14(c), 67–76.
57.Sánchez-Coello, N; Luna-Rodríguez, M; Vázquez-Torres, M; Sánchez-Velásquez,
BIBLIOTECA
DE POSGRADO
- UNT
protocolo del aislamiento del ADN y de un sistema de amplificación ISSR-PCR para Ceratozamia mexicana Brongn. (Zamiaceae). Revista Chapingo serie ciencias
forestales y del ambiente, 18(1), 123-133.
https://dx.doi.org/10.5154/r.rchscfa,2011.03.024
58.Sambrook, J; Fritsch, EF; Maniatis, T. (2001). Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 3ª Ed.Spring Harbor LaboratoryPress,
59.Sanjinés, A; Øllgaard, B; Balslev, H. (2006). Frutos comestibles. Botánica
Económica de los Andes Centrales.; 329-346.
60.Suárez, S. (2019). Filogeografía del alga Chondracanthus chamissoi
(Gigartinaceae, Rhodophyta) en la costa peruana usando marcadores moleculares’’, Tesis para optar por el Título de Ingeniero Pesquero. Universidad Nacional Agraria la Molina.
61.SIICEX, Sistema Integrado de Información de Comercio Exterior, Lima. (2019).
Retrieved from http://www.siicex.gob.pe/siicex/portal5ES.asp?_page_=160.00000
62.Tamura K., Dudley, J., Nei, M; Kumar, S. (2007). MEGA4: Molecular Evolutionary
Genetics Analysis (MEGA) software version 4.0. Molecular Biology and Evolution 24: 1596-1599.
63.Tomas, PA. (2017). Análisis de diversidad genética en Ziziphus mistol Griseb. mediante marcadores moleculares ISSR. Revista FAVE - Ciencias Agrarias 16 (1): 153-162
64.Utrera, L; Martínez, T. (1994). Caracterización in situ de zapote (Pouteria sapota
(Jacq) Moore Stearn en Chiquimulilla y Guazacapan, Santa Rosa, Guatemala. TIKALIA.; 7(2).: 35-50.)
65.von May, R; Catenazzi, A; Angulo, A; Venegas, PJ., Aguilar, C. (2012).
BIBLIOTECA
DE POSGRADO
- UNT
técnicas modernas y procedimientos administrativos eficientes. Revista Peruana de Biología, 19(3), 351-358.
66.Wilson, E.. (2000). A global biodiversity map. Science. 289: 2279.
67.Wilson, E.. (2004). Taxonomy as fundamental discipline. Philosophical Transactions
of the Royal Society of London. B 359: 739.
68.Wu, W; Chen, F; Yeh, K; Chen, J. (2019). ISSR analysis of genetic diversity and
structure of plum varieties cultivated in Southern China. Biology, 8(1), 1–13. https://doi.org/10.3390/biology8010002
69.Yahia, EM; Gutierrez-Orozco, F. (2011). Lucuma (Pouteria lucuma (Ruiz and
Pav.) Kuntze). In E. M. Yahia (Ed.), Postharvest biology and technology of tropical
and subtropical fruits (pp. 443–450e). Cambridge, UK: Woodhead Publishing.
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ANEXOSANEXO 1: Procesamiento muestra de hojas de Pouteria lucuma
a. Pulverización en mortero
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ANEXO 2: Proceso de pulverización de la muestra de hojas de Pouteria lucuma
A. Machacado
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ANEXO 3: Lisis de células de Pouteria lucuma
a. Pulverización de la muestra de hojas de Pouteria lucuma colocado en tubos de microcentrifuga para dar inicio a la lisis de las células de P. lucuma.