Future Work

Se realizó la salida preliminar a campo el día domingo 25 de abril para el reconocimiento del lugar y así poder establecer en que zonas debemos poner las redes de niebla y las trampas de golpe. Se partió a las 7:00 am de la Universidad (área de biomédicas).

Hacia la plaza de Quequeña se llegó a las 8:30 am, caminamos por las chacras aledañas al río Sogay; estableciendo cuales serían nuestros puntos de muestreo para nuestras salidas de campo próximas.

FOTO N° 11.- Chacras aledañas al río Sogay (Fuente: Propia)

En la salida de reconocimiento nos percatamos que el cauce del río era pedrogosoy el agua que discurre por este era escasa en algunos trayectos por lo que presumimos que no habría peces.

50 PRIMERA SALIDA

Se realizó la primera salida de campo el día viernes 08 de mayo. Se partió a las 6:00 pm de la Universidad (área de biomédicas) hacia el primer punto de muestreo establecido en la salida preliminar; pasamos por la plaza de Quequeña a las 8:00 pm. Se procedió a poner el campamento a las 8:30 pm, de ahí como lo indica en la metodología ya mencionada anteriormente se preparó el cebo y se distribuyó las trampas de golpe.

FOTO N°13.- Verificando que las trampas sean funcionales (Fuente: Propia)

Se colocaron las redes de niebla a las 4 am cada 1 hora revisábamos si alguna ave había quedado atrapada; las redes de niebla solo estuvieron por un lapso de 12 horas.

51 Para las tres salidas de campo siguiente, las metodologías utilizadas son las mismas por lo que obviamos volver a redactarlas, posteriormente en los resultados se indicaran en que salidas se encontraron los especímenes correspondientes.

FOTO N°15.- Desenredando las redes de niebla (Fuente: Propia)

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d) DE LABORATORIO

Para el trabajo en laboratorio se hizo uso del manual de López et. al, 1998. Adaptándolo a nuestros requerimientos y especímenes de trabajo.

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ANFIBIOS

MUERTE.- En campo

FIJACIÓN.- En campo

PRESERVACIÓN

Se preservó con alcohol al 96% , solo se preservó un individuo adulto, dada la disminución de poblaciones de anfibios de sus diferentes ecosistemas, tanto a nivel nacional y fundamentalmente de nuestra localidad.

LIMPIEZA

Luego de vaciar el contenido de las glándulas falsas parótidas se procedió al lavado de los especímenes con abundante agua y jabón.

PREPARACIÓN

El espécimen fue colocado en una posición adecuada para endurecerse. Se le colocó en un recipiente de fondo plano y entre dos capas de papel mojados con fijador,

Luego se añadió fijador al recipiente (hasta 1 cm. de altura por sobre su superficie dorsal). López et al., 1998

El anfibio fue colocado en posición ventral con los miembros libres.

54 ALMACENAJE:

El individuo fue guardado con alcohol al 96 % (etanol). Fue colocado en un recipiente de polietileno transparente apropiado. (López et al., 1998)

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REPTILES

MUERTE.- En campo

FIJACIÓN.- En campo

PRESERVACIÓN

De nuestros dos especímenes e uno preservó con alcohol al 96%. Para evitar su endurecimiento y el otro debido a su estado se tuvo que preservar en formol al 10%.

LIMPIEZA:

Se procedió al lavado de los especímenes con agua y jabón.

FOTO N°.20- Limpieza del ofidio (Fuente: Propia) PREPARACIÓN

El espécimen fue colocado en una posición adecuada para endurecerse. Se colocó en un recipiente de fondo plano y se añadió fijador al recipiente (hasta 1 cm. de altura por sobre su superficie dorsal). Un ofidio fue colocado en posición ventral con la cola extendida. (López et al., 1998)

56 ALMACENAJE:

Uno de los ofidios fue guardado con alcohol al 96 % (etanol) y colocado en un recipiente de polietileno transparente apropiado. (López et al., 1998)

FOTO N°22.- Ofidio almacenado con alcohol al 96%(Fuente: Propia) Y el individuo que estaba en mal estado tuvo que ser almacenado en formol y colocado en un recipiente de polietileno transparente apropiado. (López et al., 1998)

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AVES

MUERTE.- En campo

FIJACIÓN.- En campo

PRESERVACIÓN

Cuatro de nuestros especímenes se preservaron con alcohol al 96%. Para evitar su endurecimiento y el otro se moteo en campo por lo que no se preservó

LIMPIEZA:

Se procedió al lavado de los especímenes con agua y jabón.

PRESERVACIÓN:

Algunos especímenes debido a su tamaño (pequeños) fueron colocados en algodón y alcohol etílico al 96% en recipientes transparentes de polietileno sumergidos totalmente, para garantizar el no deterioro de las partes de importancia taxonómica.

58 PREPARACIÓN DE PIEL

 Se colocó el ave de espaldas con el vientre hacia arriba, se separó las plumas de la parte ventral del abdomen con ayuda de un algodón humedecido con alcohol separándolas del todo.

 Usando un bisturí se procedió a cortar solo la piel evitando tocar la pared del cuerpo, en línea recta desde el tercio inferior del esternón hasta cerca de la cloaca. Con ayuda de pinzas y estiletes se procedió a separar la piel, humedeciendo constantemente ésta, para evitar que se rompa. Se siguió hasta las patas del ave, luego se sacó la rodilla, se realizó un corte y se quitó el músculo del hueso, se hizo lo mismo con la otra pierna. Una vez limpios los huesos (tibiotarsos), se colocó algodón, a manera de reemplazar los músculos.

 El siguiente corte, se realizó bajo la cloaca, teniendo cuidado de no cortar las plumas caudales, se desprendió la piel desde la rabadilla hasta la espalda. Seguidamente se trabajaron las alas, se cortó el húmero y se limpió, de la misma forma que en las patas, se reemplazaron los músculos por algodón; se hizo lo mismo con la otra ala.

 Luego se desprendió la piel hasta el cuello empujando para dejar parte de la cabeza libre (parte más ancha del cráneo), se siguió separando la piel hacia el pico, se extrajeron los globos oculares y la masa encefálica con ayuda de pinzas. Se limpió el cráneo y fue cubierto nuevamente con la piel. Con ayuda de pinzas, se sacó parte de la lengua y se hizo la limpieza de la grasita y músculos que quedaron en la piel.

 Con algodón se simuló los glóbulos oculares extraídos y fueron colocados en su lugar, se enrolló algodón en un palo delgado para reemplazar el cuerpo, éste fue colocado en el interior, finalmente se acomodó todo y se cosió la piel.

ALMACENAJE

Algunos especímenes fueron colocados en algodón y alcohol etílico al 96% debido a su tamaño (pequeños); se preparó la piel de otros especímenes que eran de tamaño adecuado para este procedimiento.

Según la guía “Preparación y Taxidermia de Vertebrados para Estudio e investigación” (López et al.; 1998)

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