EN FUNCION DEL HALO DE CRECIMIENTO (mm)
TIEMPO 24 Horas 48 Horas 72 Horas
CONTROL Crecimiento Crecimiento Crecimiento
SULFATO DE ZINC AL 3% Crecimiento Crecimiento Crecimiento
SULFATO DE ZINC AL 5% 16 mm 16 mm 16 mm
SULFATO DE ZINC AL 7% 20 mm 20 mm 20 mm
Si se asume que el término “crecimiento” indica que no hay halo de inhibición, se puede comprobar en medio sólido que el Sulfato de Zinc al 5% es la Concentración Minina Inhibitoria, produciendo un halo de inhibición de 16 mm y que un halo de 20 mm al 7% aumenta la inhibición un 20% más, en cualquier tiempo de incubación.
Tabla No 12. RESULTADOS DE LA MEDICION DE HALOS A LAS 24, 48 Y 72 HORAS
DE LAS CEPAS DE C. albicans ESTUDIADAS Y CEPA CONTROL ATCC90028
CEPAS Sulfato de Zinc al 3% Sulfato de Zinc al 5% Sulfato de Zinc al 7% Sol. Sal. Fisio. 0.9% 24 H 48 H 72 H 24 H 48 H 72 H 24 H 48 H 72 H 24 H 48 H 72 H ATCC
90028 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
20 mm 20 mm 20 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
1 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
20 mm 20 mm 20 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
2 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
19.7 mm 19.7 mm 19.7 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
3 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
19.7 mm 19.7 mm 19.7 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
4 crecimiento crecimiento crecimiento 15 mm 15 mm 15 mm
19 mm 19.5 mm 19 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
5 crecimiento crecimiento crecimiento 15 mm 15 mm 15 mm
19 mm 19 mm 19 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
6 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
19 mm 19.5 mm 19 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
7 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
20 mm 20 mm 20 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
8 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
20 mm 20 mm 20 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
9 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
19.3 mm 19.3 mm 19.5 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
10 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
19.3 mm 19.3 mm 19.5 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
11 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
20 mm 20 mm 20 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
12 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
20 mm 20 mm 20 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
13 crecimiento crecimiento crecimiento 16 mm 16 mm 16 mm
20 mm 20 mm 20 mm
crecimiento crecimiento crecimiento
Las cepas analizadas y la cepa control presentaron un formación de halo muy homogéneos, en las cepas números 4 y 5 se observaron una disminución de un milímetro con respecto al promedio total en la concentración del 5%, pero a la concentración del 7% no se observa este cambio.
Tabla No 13.
Análisis por microscopia electrónica de barrido
Tiempo 24 horas 48 horas 72 horas
Control Crecimiento Crecimiento Crecimiento ZnSO4 3% Biopelícula Biopelícula Biopelícula
ZnSO4 5% Pseudomicelio Pseudomicelio Pseudomicelio
ZnSO4 7% Lisis celular Lisis celular Lisis celular
Los datos de Microscopia de Barrido Electrónico, indican que una concentración de Sulfato de Zinc de 7%, es capaz de producir lisis celular en la Candida albicans,
mientras que concentraciones menores no lo hacen. Conclusión: Para que haya inhibición total del crecimiento, la concentración debe ser del 7%.
Figura 11
Se observa en la figura 11 que entre la muestra control y el Sulfato de Zinc al 3%, hasta las 48 horas no hay diferencia. A las 72 horas ya se nota una diferencia que corresponde al 13.75 del control. La Concentración Minina Inhibitoria es de 5%, ya que inhibe el crecimiento a partir de las 24 horas. La concentración del 7% inhibe el 100% del crecimiento en todos los tiempos observados.
0 500 1000 1500 2000 24 48 72 C re ci m ie n to ( u .f .c .) Tiempo (horas)
Fig.1 Crecimiento de C.albicans vs tiempo a diferentes concs. de sulfato de Zinc en medio líquido
Control
ZnSO4 3%
ZnSO4 5%
BIBLIOGRAFIA
1. Hernández‐Solís SE, Rueda‐Gordillo F, Pereira‐Góngora JR, Villamil‐Urzaiz JL. Frecuencia de portadores de C. albicans en un grupo de niños de una
comunidad rural del estado de Yucatán. México. Revista Odontológica Latinoamericana. (2008) Vol. 0 | Núm. 1 | pp 1‐4.
2. Rueda‐Gordillo F, Hernández‐Solís SE. Prevalencia de Candida albicans aislada
de la cavidad oral de pacientes con cáncer. México. Revista Odontológica Latinoamericana. (2008) Vol. 0 | Núm. 2 | pp 38‐4.
3. Jaimes Aveldañez, Alejandra. Hernández Pérez Francisco, Martínez Herrera, Erick. Rodríguez Carreón, Alma Angélica. Arenas Guzmán Roberto. Portadores
de Candida en la mucosa oral: tipificación de 35 cepas con CHROMagar
Candida Med Int Mex 2008;24(4):262-6.
4. Reference Method for Broth Dilution Antifungal Susceptibility Testing of Yeats; Approved Standard, Second Edition. M27-A2. Vol 22 No 15. Clinical Laboratory Standards Institute (CLSI).
5. Ramage Gordon, Saville, Stephen P. Thomas, Derek P. and. Lopez-Ribot Jose´
L Candida Biofilms. Eukaryotic Cell, Apr. 2005, p. 633–638 Vol. 4.
6. Villamón E, Murciano C. Gozalbo D Roig P, O’Connor JE, and Gil ML (2006). Toll-Like Receptor 4 defective mice carrying point or null mutations do not show increased susceptibility to Candida albicans infections Medical Mycology 44: 149-157.
7. Hong Xin, Dziadek S, Bundle D and Cutler J. Synthetic glycopeptide vaccines combining β-mannan and peptide epitopes induce protection against candidiasis.
Health National Academy of Sciences of the USA 2008.
8. VelazcoI, Gladys; Ortiz Reynaldo; Arellano Leylan; Bustillos Lorena; Ana julia. Evidencia microscópica de la presencia de Candida albicans en bases
albicans present in prosthetic bases removed of buccal cavity Revista Cubana
de Estomatología. 2009; 46(2).
9. Cortés, Jorge Alberto. Reyes Patricia, Gómez Carlos, Buitrago Giancarlo, Leal. Aura Lucía on behalf of Grebo. Fungal bloodstream infections in tertiary care hospitals in Colombia Revista Iberoamericana de Micología. Rev Iberoam Micol. 2011;28(2):74–78.
10. Orozco, Paula Andrea. Cortés Jorge Alberto y Claudia Marcelo. Parra. Colonización por levaduras en recién nacidos y personal de salud en la unidad de cuidados intensivos neonatales de un hospital universitario en Bogotá, Colombia. Rev Iberoam Micol. 2009;26(2):108-11.
11. Hoehamer, Christopher F. Cummings, Edwin D. Hilliard, George M. and Rogers P. David. Changes in the Proteome of Candida albicans in Response to
Azole,Polyene, and Echinocandin Antifungal Agents. Antimicrobial Agents And Chemotherapy, May 2010, p. 1655–1664 Vol. 54, No. 5.
12. Castrillón Rivera, Laura Estela. Palma Ramos, Alejandro, en Padilla Desgarennes María del Carmen. Importancia de las biopelículas en la práctica médica. Dermatología Mexico. Rev Mex 2010;54(1):14-24.
13. Vediyappan, Govindsamy, Rossignol, Tristan and d’Enfert. Christophe. Interaction of Candida albicans Biofilms with Antifungals: Transcriptional
Response and Binding of Antifungals to Beta-Glucans. Antimicrobial Agents And Chemotherapy, May 2010, p. 2096–2111 Vol. 54, No. 5.
14. Arikan, S., Akova, et. al., Correlation of in vitro fluconazole susceptibility with clinical outcome for severely ill patients with oropharyngeal candidiasis. En: Clin Infect Dis, Vol. 26, (1998); 903-908 p.
15. Al-Fattani Mohammed A. and Douglas, L. Julia. Penetration of Candida Biofilms
by Antifungal Agents. Antimicrobial Agents And Chemotherapy, Sept. 2004, p. 3291–3297 Vol. 48, No. 9.
16. Rouabhia M, et. al., Virulence of the Fungal Pathogen Candida albicans Requires the Five Isoforms of Protein Mannosyltransferases. U:S.A. En Infect Immun., Vol. 73, No.8, (Ago. 2005); 4571-4580 p.
17. Liébana Ureña José. Microbiología. Oral Última versión: 2011-11-06 06:34.
18. Hernández‐Solís SE, Rueda‐Gordillo F, Pereira‐Góngora JR, Villamil‐Urzaiz JL. Frecuencia de portadores de C. albicans en un grupo de niños de una
comunidad rural del estado de Yucatán. México. Revista Odontológica Latinoamericana. (2008) Vol. 0 | Núm. 1 | pp 1‐4.
19. Jaimes Aveldañez, Alejandra. Hernández Pérez, Francisco, Martínez Herrera, Erick, Rodríguez Carreón, Alma Angélica. Arenas Guzmán Roberto. Portadores
de Candida en la mucosa oral: tipificación de 35 cepas con Chromoagar
Candida Med Int Mex 2008;24(4):262-6.
20. Rueda‐Gordillo F, Hernández‐Solís SE. Prevalencia de Candida albicans aislada
de la cavidad oral de pacientes con cáncer. México. Revista Odontológica Latinoamericana. (2008) Vol. 0 | Núm. 2 | pp 38‐41.
21. Ribeiro, Evandro Leão, Campos, Cerise de Castro, Cardoso, Clever Gomes, Ferreira, Wesley Magno, Pimenta, Fabiana Cristina , Toledo, Orlando Ayrton d. Buccal Candida albicans OF Children With Down’s Syndrome: Behavior OF Germ Tubes, Exoenzimes And Sensibility To Killer Toxins. Revista Odonto Ciência – Fac. Odonto/Pucrs, v. 22, n. 57, jul./set. 2007 . 243 p.
22. C. Figuerasa, C. Díaz de Herediab, J.J. García, M. Navarrod, J. Ruiz- Contrerase, R. Rossichf, J. Rumbaog, M.A. Fricka y E.M. Rosellóh, diagnóstico y tratamiento de la candidiasis invasiva An Pediatr (Barc). 2011;74(5):337.e1— 337.e17.
23. Rios, Inmaculada. Caracterización funcional de los genes Eng 1 y Eng 2 de
Candida albicans, Tesis doctoral, Universidad Complutense de Madrid, España.
diciembre, 2001. P. 88.
24. Ye Jin, Lakshman P. Samaranayake, Yuthika Samaranayake, Hak Kong Yip. Biofilm formation of Candida albicans is variably affected by saliva and dietary sugars, Faculty of Dentistry, The University of Hong Kong, Oral Biosciences, 5/F,Accepted 23 April 2004 Archives of Oral Biology (2004) 49, 789—798.
25. Gordon Ramage, Stephen P. Saville, Derek P. Thomas, and Jose L. Lopez- Ribot. Candida Biofilms, American Society for Microbiology, 2005, Vol. 4, No. 4.
26. Souza, N., Ferreira, W. M., Cardoso C. G., Dias, S. M. S.1, Pimentaimenta, F. C.
and Toledo, O. Phenotypic Aspects Of Oral Strains Of Candida albicans IN
Children With Down’s Syndrome Braz. J. Biol., 66(3): 939-944, 2006.
27. Arendorf, T. M.; Walker, D. M. (1980). The prevalence and intra-oral distribution of Candida albicans in man. Arch. Oral Biol. 25:1-10.
28. Grimoud, A.M.; Lodter, J.P.; Marty, N; Andrieu, S; Bocquet, H; Linas, M.D.,
Rumen, M, Cazard, J.C. Imporved oral hygyene and Cnadida species colonization levl in geriatric putients Oral Diseases (2005) 11: 163-169.
29. Kadir, T, Uygun; B ; Akyuz, S. prevalence of Candida species in Turkish
childrens: Relationship between dietary intake and Carriaje. Archives of oral Biology (2005) p. 50-33-37.
30. Starr, J.R.; White, T.C.; Leroux, B.G.; Luis, H.S. (2002). Persistence of oral
Candida albicans carriage in healthy Portuguese schoolchildren followed for 3
years. Oral Microbiol Immunol. 17, p. 307-310.
31. Ohmit, SE.; Sobel, J.D.;Schuman,P.; Duerr, A.;Mayer,K.; Rompalo, A.; Klein,
R.S. Longitudinal Study of mucosal candida species ization and candidiasis among human inmunodeficiency virus (VIH) – seropositive d at risk HIV- seropositive women. Journal of infections Diseases (2003) vol 188 p. 118-127.
32. Bader, Teresa, et. al., Calcineurin Is Essential for Virulence in Candida albicans.
München. En: Infection And Immunity, Vol. 71, No. 9, (Sept. 2003); 5344-5354 p 33. Lui,X,liu,H,Guo,z;Luan,W.Association of asymptomatic oral candidal carriaje,oral
candidiasis, and cd4+Lymphoujte count in HIV positive patients in China. Oral Discases (2006) vol 12, p 41- 44.
34. Tekeli, A; Dolapaci, L; Emral, R; Cesur, S, Candida Carriage and candida
dublimensis in oropharyngeal simples of type, - L diabetes mellitas patients, Mycroses, Vol 47 P. 315-318, 2004
35. Ertekin, MV, y col., Zinc sulfate in the prevention of radiation-induced
oropharyngeal mucositis: a prospective, placebo-controlled, randomized study.U.S.A. En Int J Radiat Oncol Biol Phys, 58, 2004; 167-174 p.
36. Emrich Carl W. Emrich LS. Management of oral mucositis during local radiation
and systemic chemotherapy a study of 98 patients U:S:A En:L.Prosthet Dent. Vol 66 (1991); 361-369 p
37. Spielberger R, y col. Palifermin for Oral Mucositis after Intensive Therapy for
Hematologic Cancers. England., N Engl J Med, 35, 2004; 2590-2598 p.
38. Morales, B. A., Úlcera gastroduodenal. Revista de la Sociedad Chilena de
Gastroenterología. Santiago De Chile. Octubre 2002; 96-103 p.
39. Mendicote Leon, F. Toxicidad y tratamientos de soporte en oncología
radioterápica: toxicidad en el área de O.R.L. (Barcelona.). En: Prevención y tratamiento. Oncología, Vol. 28, No.2, (2005); 30-34 p.
40. Kwong KKF. Prevention and Treatment of Oropharyngeal Mucositis Following
Cancer Therapy: Are There New Approaches?. U.S.A. En: Cancer Nurs, Vol. 27, (2004); 183-205 p.
41. Carl W, Emrich LS. Management of oral mucositis during local radiation and
systemic chemotherapy: a study of 98 patients. U:S:A: En: J Prosthet Dent, Vol. 66, (1991); 361-369 p.
42. Eisbruch A, et al. The Prevention and Treatment of Radiotherapy-Induced
Xerostomia. U:S:A_ En: Semin Radiat Oncol, Vol. 13, (2003); 302-308 p.
43. Rosado JL, López P, Muñoz E, Martínez H, Allen LH. Zinc supplementation
reduced morbidity, but neither zinc nor iron supplementation affected growth or body composition of Mexican preschoolers. Am J Clin Nutr 1997; 65:13-19.
44. Masuoka, James. Surface Glycans of Candida albicans and Other Pathogenic
Fungi: Physiological Roles, Clinical Uses, and Experimental Challenges. Virginia. Clinical Microbiology Reviews, Vol.17, No. 2, (Apr. 2004); 281–310 p.
45. Cheng G, Yeater KM, Hoyer LL. Cellular and Molecular Biology of Candida
albicans Estrogen Response.Eukaryot Cell., Vol. 5, No.1, (Ene. 2006); 180-191p.
46. Masuoka, James. Surface Glycans of Candida albicans and Other Pathogenic
Fungi:Physiological Roles, Clinical Uses, and Experimental Challenges. Virginia. Clinical Microbiology Reviews, Vol. 17, No. 2, (Abril 2004); 281–310 p
47. Bader Teresa, et. al., Calcineurin Is Essential for Virulence in Candida albicans.
Munich. En: Infection And Immunity, Vol. 71, No.2, (Sept. 2003); 5344–5354 p. 48. Kadosh D, Johnson AD. Induction of the Candida albicans Filamentous Growth
Program by Relief of Transcriptional Repression: A Genome-wide Analysis.En: Mol Biol Cell., Vol. 16, No.6, (Jun. 2005); 2903-2912 p.
49. Rouabhia M, Schaller M,, Virulence of the Fungal Pathogen Candida albicans Requires the Five Isoforms of Protein Mannosyltransferases. En:Infect Immun., Vol. 73, No. 8, (Aug. 2005); 4571-4580 p.
50. Andes D, Nett J, et. al., A Development and Characterization of an In Vivo Central Venous Catheter Candida albicans Biofilm En: Model.Infect Immun., Vol. 72, No. 10, (Oct. 2004); 6023-6031 p.
51. Makarova NU, et. al., Persistence of Oropharyngeal Candida albicans Strains with Reduced Susceptibilities to Fluconazole among Human Immunodeficiency Virus-Seropositive Children and Adults in a Long-Term Care Facility. En: J Clin Microbiol., Vol. 41, No. 5, (Mayo 2003); 1833-1837 p.
52. Santos, Patricia Ester. Códoba, Susana. Carrillo-Muñoz, Alfonso. Rodero, Laura Rubeglio Etelvina y Soria Marcelo. Epidemiología de las fungemias en un hospital pediátrico de alta complejidad Rev Iberoam Micol.2010;27(4):200–202 53. Makarova NU, et. al., Persistence of Oropharyngeal Candida albicans Strains
with Reduced Susceptibilities to Fluconazole among Human Immunodeficiency Virus-Seropositive Children and Adults in a Long-Term Care Facility. En: J Clin Microbiol., Vol. 41, No. 5, (Mayo 2003); 1833-1837 p.
54. Samaranayake, Y. H. et.; al. In Vitro Method To Study Antifungal Perfusion in Candida Biofilms.En: Journal of Clinical Microbiology. Vol. 43, No.2, (2005); 818– 825 p.
55. Samaranayake, L. P., Macfarlane, T.W. (1980). An in vitro study of the adherence of Candida albicans to acrylic surfaces. En Arch. Oral Biol., Vol. 25, (1980); 603–609 p.
56. Chaffin WL, lópez-Ribot JL, et. al., Cell Wall and Secreted Proteins of Candida albicans: Identification, Function, and Expression.Texas. En: Microbiol Mol Biol Rev., Vol. 62, No.1, (Mar. 1998); 130-180 p.
57. Cheng G, et. al., Cellular and Molecular Biology of Candida albicans Estrogen Response.Eukaryot Cell., Vol. 5, No. 1, (Ene 2006); 180-191 p.
58. Tournu H, et. al., Global Role of the Protein Kinase Gcn2 in the Human Pathogen Candida albicans. En: Eukaryot Cell., Vol. 4, No. 10, (Oct. 2005);1687- 1696 p.
59. Rouabhia M, Schaller M, Virulence of the Fungal Pathogen Candida albicans Requires the Five Isoforms of Protein Mannosyltransferases. En Infect Immun., Vol. 73, No. 8, (Ago. 2005); 4571-4580 p.
60. Sánchez-Vargas Luis Octavio, et. al., Point prevalence, microbiology and antifungal susceptibility patterns of oral Candida isolates colonizing or infecting
Mexican HIV/AIDS patients and healthy persons. Mexico. En: Rev Iberoam Micol, Vol. 22, (2005); 83-92 p.
61. Chaffin WL, López-Ribot JL, et. al., Op., Cit.130-180 p.
62. Martinez-Lopez R, et. al.,Candida albicans Ecm33p Is Important for Normal Cell Wall Architecture and Interactions with Host Cells.En Eukaryot Cell., Vol. 5, No.1, (Ene. 2006); 140-147 p.
63. Brawner Diane L. And Cutler Jim E. Oral Candida albicans Isolates from Nonhospitalized NormalCarriers, Immunocompetent Hospitalized Patients, and Immunocompromised Patients with or without Acquired Immunodeficiency Syndrome. U.S.A. En: Journal OF Clinical Microbiology, Vol. 27, No.6, (Jun. 1989); 1335-1341 p.
64. Cheng G, et. al., Cellular and Molecular Biology of Candida albicans Estrogen Response.Eukaryot Cell., Vol. 5, No. 1, (Ene 2006); 185 p.
65. Díaz-López Mónica María, et. al., Análisis SSCP (ITS2, ERG11) de aislamientos
clínicos de Candida spp.de cavidad oral en pacientes oncológicos. Bogotá En:
66. Cardona-Castro Nora, et. al., Proteinase detection, DNA typing andantimycotic susceptibility of Candida isolates from Colombian women withvulvovaginal candidiasis Medellín-Texas. En: Rev Iberoam Micol, Vol. 19, (2002); 89-94 p. 67. Andes D., Nett, J. Osche P. R.,Albrecht K. Marchillo, and Pitula A. Development
and Characterization of an In Vivo Central Venous Catheter Candida albicans
Biofilm Model. Wisconsin. En: Infection And Immunity, Vol. 72, No. 10, (Oct. 2004); 6023–6031 p.
68. Regezzi, J.A.; Sciubba, J.J., Patología Bucal. Correlaciones clinicopatológicas. Tercera edición. McGraw Hill Interamericana, (2000); 110-117 p.
69. Murray, P. R; et., al. Medical microbiology, 2° ed, Mosby, (1990); 570 p.
70. Arendorf, T. M.; Walter, D. M. (1980). The prevalence and intra-oral distribution of Candida albicans in man. En: Arch. Oral Biol., Vol. 25, (1980); 1-10 p.
71. Starr, J.R., el al., Persistence of oral Candida albicans carriage in healthy Portuguese schoolchildren followed for 3 years. En: Oral Microbiol Immunol. Vol. 17, (2000); 307-310 p.
72. De Bernardis, F., et. al., The pH of the Host Niche Controls Gene Expression in and Virulence of Candida albicans. En; Infect. Immun., Vol. 66, (1998), 3317- 3325 p.
73. Regezzi, J.A.; Sciubba, J.J. Patología Bucal. Correlaciones clinicopatológicas. Tercera edición. McGraw Hill Interamericana, México, (2000); 110-117 p.
74. Margiotta V, Campisi G, et. al., HIV infection: oral lesions, CD4+ cell count and viral load in an Italian study population. En: Journal of Oral Pathology and Medicine, Vol. 28, (1999);173-7 p.
75. Ibid. 112.p
76. Shay, K.; et.al., (1997) Oropharyngeal candidosis in the older patient. En: J Amer Geriatric Soc, Vol. 45, (1999); 863-870 p.
77. Regezzi, J.A.; Sciubba, J.J. Patología Bucal. Correlaciones clinicopatológicas. Tercera edición. McGraw Hill Interamericana, Mexico, (2000); 110-117 p.
79. Sitheeque, M.a.m.; Samaranayake, L.P. Chronic hyperplastic candidosis/candidiasis (candidal leukoplakia). En: Crit Rev Oral Biol Med., Vol. 14, No.4, (2003); 253-267 p.
80. Ibid 267 p.
81. Bohórquez, Sonia, Mg Sc. En: Patología Oral.
82. Sitheeque, M.A.M.; Samaranayake, L.P. Chronic hyperplastic candidosis/candidiasis (candidal leukoplakia). En: Crit Rev Oral Biol Med., Vol. 14, No.4, (2003); 253-267 p.
83. Bohórquez, Op. Cit.
84. Coogan, M.M.; et. al., Oral lesions in infection with human immunodeficiency virus. En: Bulletin of the World Health Organization, Vol. 83, (2005); 700-706 p. 85. Ramos-Gómez FJ, et al. Classification, diagnostic criteria, and treatment
recommendations for orofacial manifestations in HIV-infected paediatric patients.En: J Clin Pediatr Den, Vol. 23, No.2, (1999); 85–96 p.
86. Margiotta V, et. al., HIV infection: oral lesions, Cd4+ cell count and viral load in an Italian study population. En: Journal of Oral Pathology and Medicine,2 Vol.28, (1999); 173-7 p.
87. www.uv.es/medicina-oral/Docencia/atlas/4/1.htm
88. Fidel Paul L., et. al., Candida glabrata: Review of Epidemiology, Pathogenesis, and Clinical Disease with Comparison to C. albicans. U.S.A. En: Clinical Microbiology Reviews, Vol. 12, No. 1, (Ene. 1999); 80–96 p.
89. Lumbreras, Carlos; Lizasoain , Manuel y Aguado, José María. Antifúngicos de uso sistémico. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. España ( 2003); 21 No.7, 366 p. 90. Ibid 368 p.
91. Hernández, María Luisa, et. al., Aspectos moleculares y genéticos de la resistencia a azoles en Cándida albicans. España. En: Rev Iberoam Micol, Vol.
14, (1997); 150-154 p.
92. Samaranayake, Y. H., et. al., In Vitro Method To Study Antifungal Perfusion in
Candida Biofilms. Hong Kong. En: Journal OF Clinical Microbiology, Vol. 43, No.
93. Douglas L. Julia. Medical importance of biofilms in Candida infections. United
Kingdom. Rev Iberoam Micol, Vol. 19, (2002); 139-143 p.p
94. Kojic Erna M. And Darouiche Rabih O. Candida Infections of Medical Devices.
Houston. En: Clinical Microbiology Reviews, Vol. 17, No. 2., (Apr. 2004); 255– 267 p.
95. Chandra Jyotsna, et. al., Biofilm Formation by the Fungal Pathogen Candida
albicans Development, Architecture, and Drug Resistance. U.S.A. En: Journal
OF Bacteriology, Vol. 183, No. 1, (Sept. 2001), 5385–5394 p.
96. Lumbreras, Carlos; Lizasoain, Manuel y Aguado, José María. Antifúngicos de uso sistémico. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. España ( 2003); 21 No.7, 370 p. 97. Rosado, Jorge L. Zinc deficiency and its functional implications. Salud pública
Méx , Cuernavaca, Vol. 40, Nº2.(1998), 718 p.
98. Calesnick B, Dinan AM. Zinc deficiency and zinc toxity. AM Fam Practice, Vol. 37, (1988); 267-270 p.
99. Ruiz O, Manuel. Nutrientes críticos desde el preescolar al adolescente., En: Rev. chil. pediatr., Vol. 77, No.4, (Aug. 2006); 395-398 p.
100. Food and Nutrition Board Institute of Medicine, (1997-2001).
101. Wightman f, Lee M., Zinc supplementation, En: Journal Internal Medicine, Nº 12, (Dic. 1999).
102. Klug A, Rhodes D. “Zinc-Fingers”: A novel protein motif for nucleic acid recognition. Trends Biochem Sci 1987; 12-461.p
103. Vilas Mahía et. al., Suplementos de cinc y función de las células
inmunes en diabéticos Cuba. En: Revista Cubana de Angiología Y Cirugía Vascular., Vol. 5, No.1, ( Ener-Dic 2004); 104 p.
104. Ibid 102 p.
105. Negroni, Marta, Microbiología Estomatológica, Editorial Panamericana, (Julio 2005); 497 p.
106. Liebana U. J. Microbiología oral. Segunda Edición, Editorial Mc Graw Hill (Interamericana) España, 2002. 106- 113 p.
de Candida albicans, Tesis doctoral, Universidad Complutense de Madrid,
España. diciembre, 2001. P. 88.
108.Ye Jin, Lakshman P. Samaranayake, Yuthika Samaranayake, Hak Kong Yip Biofilm formation of Candida albicans is variably affected by saliva and dietary sugars, Faculty of Dentistry, The University of Hong Kong, Oral Biosciences, 5/F,Accepted 23 April 2004 Archives of Oral Biology (2004) 49, 789—798. 109.Gordon Ramage, Stephen P. Saville, Derek P. Thomas, and Jose L. Lopez-
Ribot. Candida Biofilms, American Society for Microbiology, 2005, Vol. 4, No. 4. 110.Souza, N. A.3, Ferreira, W. M.1, Cardoso C. G.1,Dias, S. M. S.1,
Pimentaimenta, F. C.1 and Toledo, O. A.3 Phenotypic Aspects OF Oral Strains
OF Candida albicans IN Children With Down’s Syndrome Braz. J. Biol., 66(3):
939-944, 2006.
111.Mendicote Leon, F. Toxicidad y tratamientos de soporte en oncología radioterápica: toxicidad en el área de O.R.L. (Barcelona.). En: Prevención y tratamiento. Oncología, Vol. 28, No.2, (2005); 30-34 p.
112. Ahmad, S., Z. Khan, A. S. Mustafa, and Z. U. Khan. 2002. Seminested PCR for diagnosis of candidemia: comparison with culture, antigen detection, and biochemical methods for species identification. J Clin Microbiol 40:2483-9.
113.Fujita, S., B. A. Lasker, T. J. Lott, E. Reiss, and C. J. Morrison. 1995. Microtitration plate enzyme immunoassay to detect PCR-amplified DNA from
Candida species in blood. J Clin Microbiol 33:962-7.
114.Fujita, S., B. A. Lasker, T. J. Lott, E. Reiss, and C. J. Morrison. 1995. Microtitration plate enzyme immunoassay to detect PCR-amplified DNA from Candida species in blood. J Clin Microbiol 33:962-7.
115. Reference Method for Broth Dilution Antifungal Susceptibility Testing of Yeats; Approved Standard, Second Edition. M27-A2. Vol 22 No 15. Clinical Laboratory Standards Institute (CLSI).
116.Rios, Inmaculada. Caracterización funcional de los genes ENG 1 y ENG 2 de
Candida albicans, Tesis doctoral, Universidad Complutense de Madrid,
117.Ye Jin, Lakshman P. Samaranayake, Yuthika Samaranayake, Hak Kong Yip. Biofilm formation of Candida albicans is variably affected by saliva and dietary sugars, Faculty of Dentistry, The University of Hong Kong, Oral Biosciences, 5/F,Accepted 23 April 2004 Archives of Oral Biology (2004) 49, 789—798. 118.Gordon Ramage, Stephen P. Saville, Derek P. Thomas, and Jose L. Lopez-
Ribot. Candida Biofilms, American Society for Microbiology, 2005, Vol. 4, No. 4. 119.Souza, N, Ferreira, W., Cardoso C. G.1, Dias, S. M. S.1, Pimentaimenta, F.
and Toledo, O. phenotypic aspects of oral strains of Candida albicans in
children with down’s syndrome Braz. J. Biol., 66(3): 939-944, 2006.
120. Mendicote Leon, F. Toxicidad y tratamientos de soporte en oncología