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WORKING WITH WORKSHEET CELLS

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sanas e infectadas , de ápices de plantas de Cattleya maxima Lindl.

Las plantas resistentes tienen la capacidad de reconocer una invasión patógena debido a que están molecularmente equipadas con un sistema de alerta de

señalización(69) .Varios componentes están involucrados en este evento de

señalización. La primera es una proteína receptora única que puede estar localizada en los límites exteriores de la célula de la planta o en el citosol. Otros componentes incluyen proteínas que son responsables de la transducción de la señal al núcleo, donde la expresión inducida de genes de defensa se activa (70). Se incluyen dentro de

este grupo el gen SERK. Varias líneas de evidencia (70,71,74,76) han demostrado que SERKs como un grupo de la familia LRR-RLKs, desempeñan importantes papeles en

el reconocimiento de patógenos que activan respuestas eficaces de defensa.

En la presente investigación, se evaluó la expresión del gen CmSERK frente al ataque

de patógenos en las plantas de Cattleya maxima Lindl. La PCR de tiempo real reveló

que la infección fúngica, se relaciona con la expresión del gen CmSERK. En las

plantas, existen numerosos receptor-quinasas (RLKs), que están implicadas en la

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Kubista, M., Andrade, J., Bengsston, M., Foorotan, M., Jonák, J., Lind, K., Sindelka, R., Sjöback, R., Sjögreen, B., Strömbom, L., Sthåhlberg, A., Zoric, N (2006). The real-time polymerase chain reaction, Molecular Aspects of Medicine, Vol 27, pg: 95-125.

68

Čikoš., Š, Bukovská, S., Koppel, J (2007). Relative Quantification of mRNA: Comparison methods currently used for real-time PCR data analysis, BMC Molecular Biology, Vol 8, pg: 1-14.

69

Sessa, G. and Martin, G (2000). Protein Kinases in the Plant Defense Response. Advances in Botanical Research, 32:379-404.

70 Vanoosthuyse, V., Tichtinsky, G., Dumas, C., Gaude, T. and Cock, J.M. Interaction of Calmodulin, a

sorting nexin and kinase-associated protein phosphatase with the Brassica oleracea S locus receptor kinase. Plant Physiology, 2003; 133:919-929.

- 32 - 0 1 2 3 4 5 6

Botritys cinerea Colletotrichum acutatum

RT - PCR

ápice sano ápice infectado

percepción de señales de patógenos externos y la transferencia de las señales dentro de las células de la planta para activar un gran número de expresiones de genes (71)

Los datos presentados en la figura 11 indica que los tejidos infectados con

Colletotrichum acutatum y Botrytis cinerea aumentan la expresión del gen CmSERK,

en comparación con el tejido sano. Estos resultados se presentan de una manera similar a los resultados reportados por Hu et al.,(72) que encontró que OsSERK1, un

gen SERK de arroz recientemente identificado, al ser inducido por la infección por

patógenos y por moléculas de defensa de señalización tales como ácido salicílico, ácido jasmónico, y ácido abscísico condujo al aumento de la sobreexpresión de

OsSERK1, estas plantas de arroz transgénicas mostraron un aumento de la

resistencia a Magnapothe grisea.

De igual manera, las plantas de lechuga mostraron que el silenciamiento del gen

LsSERK redujó su capacidad de defensa y se volvieron más susceptibles al ataque de

Sclerotinia. Por lo tanto, la eliminación del gen LsSERK a través de silenciamiento de

ARN corrobora la hipótesis de que SERK está implicado en la defensa de la planta, ya

que estas plantas tuvieron que resistir el ataque de hongos (73)

71

Becraft, P (1998). Receptor kinases in plant development. Trends Plant. Sci 3:384–388.

72

Hu H, Xiong L, Yang Y (2005). Rice SERK1 gene positively regulates somatic embryogenesis of cultured cell and host defense response against fungal infection. Planta 222:107–117.

73 Santos MO, Romano E, Vieira LS, Baldoni AB, Aragão FJL (2009)Suppression of

SERK gene expression affects fungus tolerance and somatic embryogenesis in transgenic lettuce. Plant Biol 2. 11:83– 89.

Figura. 11. Expresión del gen CmSERK en respuesta al ataque de hongos patógenos. Los resultados mostrados son la media ± error estándar de 2 repeticiones biológicas.

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Se ha establecido que algunos LRR-RLKs, entre ellos SERK funcionan como

reguladores de la respuesta de defensa a patógenos bacterianos (74,75), hongo

necrotrófico (76) y la infección viral (77,78)

El análisis de la expresión génica de las muestras estudiadas demostró que existen diferencias significativas entre tejidos, por ejemplo el tejido sano presentó índices de expresión más bajos, en comparación con el tejido infectado el cual presentó mayor expresión, sin embargo se pudo evidenciar que existe una desviación estándar algo elevada para tejido sano e infectado entre las dos repeticiones biológicas, la razón de estos resultados es posiblemente la baja cantidad de repeticiones biológicas.

Se pudo contribuir con el fin y el propósito planteado al momento de iniciar la investigación, ya que se logró aportar con conocimiento en una más de las funciones

que cumple el gen SERK en orquídeas, además de confirmar el rol que éste cumple

en la interacción planta - patógeno, al saber que SERK pertenece a una pequeña

familia de cinco receptores quinasas de plantas que están involucrados en al menos cinco diferentes vías de señalización (79) .Se dice que un miembro de esta familia,

conocido como INSENSITIVE1 brasinoesteroides (BRI1)-ASOCIADO KINASE1 (BAK1), también conocido como SERK3, es el correceptor de la brasinolida (BR)

receptor BRI1, función que es dependiente de BR y parcialmente redundantes con

SERK1. BAK1 (SERK3) solo controla la inmunidad innata planta, es también el co-

receptor del receptor de la flagelina FLS2, y, junto con SERK4, puede mediar el control

de la muerte celular (80,81)

74

Song WY, Wang GL, Chen LL, Kim HS, Pi LY, Holsten T, Gardner J, Wang B, Zhai WX, Zhu LH, Fauquet C, Ronald P (1995). A receptor kinase-like protein encoded by the rice disease resistance gene, Xa21. Science. 270 : 1804-1806

75

Godiard L, Sauviac L, Torii KU, Grenon O, Mangin B, Grimsley NH, Marco Y (2003). ERECTA, an LRR receptor-like kinase protein controlling development pleiotropically affects resistance to bacterial wilt. Plant J. 36 : 353-365.

76

Llorente F, Carlos AB, Sánchez-Rodriguez C, Jorda L, Molina A (2005). ERECTA receptor‐like kinase and heterotrimeric G protein from Arabidopsis are required for resistance to the necrotrophic fungus plectosphaerella Cucumerina. Plant J. 43 : 165-180.

77 Fontes EPB, Santos AA, Luz DF, Waclawovsky AJ, Chory J (2004). The geminivirus nuclear shuttle

protein is a virulence factor that suppresses transmembrane receptor kinase activity. Genes Dev. 18 : 2545-2556

78

Santos AA, Lopes KVG, Apfata JAC, Fontes EPB (2010). NSP-interacting kinase, NIK: a transducer of plant defence signalling. J Exp Bot . 61 : 3839-3845

79

Schmidt E, Guzzo F, Toonen M, de Vries S (1997). A leucine-rich receptor-like kinase marks somatic plant cells competent to form embryos. Development. 124: 2049–2062

80

Hecht V, Velle-Calzada JP, Hartog MV, Schmidt EDL, Boutilier K, Grossniklaus U, de Vries SC (2001) . The Arabidopsis SOMATIC EMBRYOGENESIS RECEPTOR KINASE 1 gene is expressed in developing ovules and embryos and enhances embryogenic competence in culture. Plant Physiol. 127: 803–816

81 He K, Gou X, Yuan T, Lin H, Asami T, Yoshida S, Russell SD, Li J (2007). BAK1 and BKK1 regulate

brassinosteroid-dependent growth and brassinosteroid- independent cell-death pathways. Curr Biol. 17: 1109–1115

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V. Conclusiones

 Se comprobó por medio del GenBank (herramienta Blastn), que los patógenos

aislados correspondían a Colletotrichum acutatum y Botrytis cinerea.

 La inoculación mediante el método de inyección, con suspensión fúngica, produjo infección en plantas de Cattleya maxima Lindl, evidenciándose

sintomas caracteristicos de la enfermedad de cada patógeno.

 El gen CmSERK se expresa más en el tejido infectado por suspensión fúngica,

lo que corrobora que participa en las vías de señalización de la planta cuando es atacado por los agentes patógenos.

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- 37 - ANEXO I

Extracción de ADN DNeasy Plant Mini Kit de Qiagen ® Pasos Previos:

a) Aislamiento de muestras (posible lavado y eliminación de impurezas).

b) Calentar el bloque a 65°C y colocar el buffer AE según la cantidad de muestras

c) Someter las muestras a Nitrógeno líquido y triturar.

Pasos de Extracción:

1. Colocar 400ul de buffer API mas 4ul de RNAasa, dar vortex e incubar por

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