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Treating each case holistically – applied narrative analysis Narrative analysis has been applied increasingly in the social sciences, paying

face meetings on the basis of online engagement

3.3 Part 3: Analysis of the data

3.3.1 Treating each case holistically – applied narrative analysis Narrative analysis has been applied increasingly in the social sciences, paying

En las muestras extraídas durante el monitoreo se midió además de la

biomasa, el porcentaje de azúcares residuales(Anexo 09) y el valor del pH

(Anexo 10), utilizando un brixómetro y un pH-metro, respectivamente.

Los valores de azúcares residuales y de pH obtenidos en los tres ensayos se

ordenaron en tablas, se promediaron y con estos se construyeron los gráficos

correspondientes (Anexo 09 y 10).

Además, una finalizado el proceso (Anexo 11) se determinó el porcentaje de

etanol (Anexo 12); para lo cual se añadió a cada biorreactor 200 mg de

bisulfito de sodio por litro de medio fermentado; luego se filtró cada mosto

los mismos que fueron destilados; se procedió de forma similar con el

testigo (Anexo 13). Finalmente se midió el porcentaje de etanol empleando

un alcoholímetro.

Los datos del porcentaje de etanol obtenidos en cada uno de los cuatro

biorreactores se procesaron y se graficaron para comparar la producción de

etanol en cada uno de ellos (Anexo 12).

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2.12 Análisis de datos

Los valores de la velocidad específica de crecimiento de S. cerevisiae MIT-

L51 en mostos de frutos de maracuyá, piña y uva; así como en el testigo

obtenidos en las tres repeticiones, fueron analizados estadísticamente

mediante la prueba de t de Student para comparación de promedios en cada

biorreactor82 (Anexo 14).

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22 RESULTADOS

Al evaluar la velocidad de crecimiento de Saccharomyces cerevisiae MIT-L51

en mostos de frutos de Passiflora edulis “maracuyá”, Ananas comosus “piña” y Vitis

vinifera var. gross colman “uva” durante el proceso de fermentación alcohólica, se obtuvieron los siguientes resultados:

En la Fig. 01 se presentan las curvas de crecimiento de Saccharomyces

cerevisiae MIT-L51 en cuatro biorreactores; tres conteniendo los mostos de los frutos de maracuyá, piña y uva; y el último Caldo Sabouraud Sacarosado modificado

utilizado como testigo. La tendencia del crecimiento es similar en los cuatro

biorreactores; sin embargo, se observa un mayor crecimiento en los mostos de los

tres frutos a diferencia del testigo.

La Figura 02 muestra gráficamente la fase exponencial de crecimiento de

S.cerevisiae MIT-L51, expresada en una ecuación lineal de crecimiento durante 60 horas de fermentación. Se presentan diferentes curvas en los tres mostos y en el

testigo, observándose la mayor pendiente en el mosto de piña y la menor, en el

testigo.

En la Fig. 03, se presentan los valores de las velocidades específicas de

crecimiento (µ) de Saccharomyces cerevisiae MIT-L51, expresados en h-1. Se

observa una mayor velocidad de crecimiento en los tres mostos en comparación con

el testigo; asimismo, el valor de µ es similar en los mostos de maracuyá y uva, y

mayor en piña.

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Fig. 01. Curvas de crecimiento de Saccharomyces cerevisiae MIT-L51 en mostos de

frutos de Passiflora edulis “maracuyá”, Ananas comosus “piña” y Vitis

vinifera var. gross colman “uva”, y en Caldo Sabouraud Sacarosado modificado (CSSm) utilizado como testigo, durante 180 horas de

fermentación alcohólica.

La fermentación se realizó a temperatura ambiental (23±1°C) en biorreactores cilíndricos de 850 mL. de capacidad. El crecimiento se cuantificó en Agar Sabouraud Glucosado enriquecido. 1.0E+06 1.0E+07 1.0E+08 1.0E+09 0 12 24 36 48 60 72 84 96 108 120 132 144 156 168 180 (U F C /m L )

Tiempo de fermentación (horas)

CSSm Maracuyá Piña Uva

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24

Fig. 02. Fase exponencial de crecimiento de S. cerevisiae MIT-L51 en mostos de

frutos de Passiflora edulis “maracuyá”, Ananas comosus “piña” y Vitis

vinifera var. gross colman “uva”, y en Caldo Sabouraud Sacarosado modificado (CSSm) utilizado como testigo, durante 60 horas de

fermentación alcohólica.

La fermentación se realizó a temperatura ambiental (23±1°C) en biorreactores cilíndricos de 850 mL de capacidad. La curva de la fase exponencial fue construida mediante regresión lineal y expresada en una ecuación lineal de crecimiento.

y = 0.0444x + 16.213 y = 0.0761x + 15.551 y = 0.0952x + 16.407 y = 0.0825x + 16.404 15 16 17 18 19 20 21 0 12 24 36 48 60 ln de U F C /m L

Tiempo de fermentación (horas)

Testigo Maracuyá Piña Uva Testigo Maracuyá Piña Uva Experimental Maracuyá Piña Uva CSSm Regresión lineal Maracuyá Piña Uva CSSm

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Y COMUNICACIÓN

Fig. 03. Velocidad específica de crecimiento (µ) de Saccharomyces cerevisiae MIT-

L51 en mostos de frutos de Passiflora edulis “maracuyá”, Ananas comosus

“piña” y Vitis vinifera var. gross colman “uva”, y en Caldo Sabouraud

Sacarosado modificado (CSSm) utilizado como testigo, durante el proceso

de fermentación alcohólica.

La fermentación se realizó a temperatura ambiental (23±1°C.) en biorreactores cilíndricos de 850 mL de capacidad. El valor de µ se calculó mediante regresión lineal.

0 0.01 0.02 0.03 0.04 0.05 0.06 0.07 0.08 0.09 0.1

Maracuyá Piña Uva CSSm

0.0761 0.0952 0.0825 0.0444 µ (h ) Medio de fermentación -1 (P < 0.05)

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Y COMUNICACIÓN

26 DISCUSIÓN

El crecimiento de una levadura es el aumento ordenado de sus estructuras

celulares; es pues, un proceso que partiendo de los nutrientes del medio circundante

que constituyen la fuente de materia y energía, termina en un aumento del tamaño y

peso de la célula. Este proceso está ligado a su genoma a través de un sistema de

transmisión de información12,13,83. Para que este crecimiento se genere el medio de cultivo debe tener todos los nutrientes necesarios81,84; sobre todo si se realiza en condiciones de anaerobiosis, en el cual las células no son capaces de crecer a la

misma velocidad que en aerobiosis realizando principalmente procesos de

fermentación6. En esta investigación se utilizaron mostos de frutos de maracuyá, piña

y uva, los cuales según Ribéreau-Gayon y col.27, Moreiras y col.28, Reyes y col.29, reportan que tienen cantidades suficientes de fuentes de carbono, nitrógeno y

minerales que garantizan el crecimiento de las levaduras. Los datos obtenidos que se

presentan en las Fig. 01 y 02 evidencian que Saccharomyces cerevisiae MIT-L51

crece, en anaerobiosis, en los mostos de maracuyá, piña y uva; así mismo, en Caldo

Sabouraud sacarosado modificado, utilizado como testigo.

Al analizar además las Fig. 01 y 02 se observa un mayor crecimiento de

S.cerevisiae MIT-L51 en los mostos de maracuyá, piña y uva en comparación al testigo. Estos resultados se pueden sustentar en la composición fitoquímica propia de

cada fruto, la cual brinda nutrientes y factores para su crecimiento y capacidad

fermentativa (Anexo 12); a diferencia del testigo cuya composición diferente (Anexo

06) conlleva a que su producción de biomasa y etanol se vea disminuida. Esta

observación, se sustenta en que las levaduras crecen en un medio de cultivo sólo si

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este contiene todos los nutrientes necesarios en forma disponible, tanto para la

síntesis del material celular como para la producción de metabolitos; también es

necesario que los factores ambientales sean los adecuados85,86. Según Pellon87 un medio de cultivo balanceado debe incluir una combinación de fuentes de carbono y

nitrógeno, macroelementos, microelementos y factores de crecimiento.

En la Fig. 01 no se observa fase de latencia de S. cerevisiae MIT-L51 en los mostos de piña y uva al inicio del crecimiento. Este hecho se produce porque estos

mostos contienen tiamina en cantidades mayores en relación al mosto de maracuyá,

que es considerado pobre en tiamina28,88, aún cuando la levadura es capaz de

sintetizarla de novo, ve su crecimiento acelerado y ampliado en presencia de esta vitamina24, por lo que es considerada como un potente activador del crecimiento, estimulando el metabolismo y siendo consumida en gran cantidad en la fase de

multiplicación celular, incluso más de los niveles del mosto de partida18,27.

Asimismo, en base a esta composición se puede explicar porqué, en los mostos de

piña y uva S. cerevisiae MIT-L51 describe la misma tendencia de crecimiento

acelerado hasta las 12 horas de fermentación.

De igual modo, el mayor aporte de ácido pantoténico presente en los mostos de

piña y uva28, acorta la fase de latencia, favoreciendo los fenómenos de síntesis de

proteínas89, asegurando de esta manera un rápido crecimiento; Hidalgo18, Melo y

Cuamatzi90 afirman que esta vitamina en condiciones de fermentación representa uno

de los factores de crecimiento más potentes e imprescindibles para la actividad

metabólica de las levaduras. Sin embargo, Hidalgo18 señala además que, su

importancia radica en que es un constituyente de la coenzima A, cofactor que

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28

interviene en las reacciones de acetilaciones biológicas. Mientras que para dicho

autor, es necesario que el mosto contenga un nivel suficiente de este compuesto

debido a que algunas cepas de Saccharomyces son incapaces de sintetizarla; para

Monk91, las levaduras de este género tienen la capacidad propia de sintetizar esta vitamina. Por lo tanto, se puede afirmar que la capacidad de sintetizar o no el ácido

pantoténico varía con la cepa de la levadura.

Por lo anteriormente expuesto se afirma que, el mayor contenido de tiamina y

de ácido pantoténico en los mostos de piña y uva, permite que S. cerevisiae MIT-L51

no requiera una etapa de adaptación, que es lo que sucede en la fase de latencia. Sin

embargo, en el mosto de maracuyá se observa un periodo de latencia hasta las 12

horas (Fig. 01), lo que indica que las levaduras necesitan un tiempo relativamente

largo para adaptarse a las nuevas condiciones del medio de fermentación y que el

mayor o menor tiempo de duración de esta fase va a depender de la composición del

mosto en el cual desarrolla; también es necesario considerar la fuente carbonada

energética y la fuente nitrogenada50.El mosto de maracuyá contiene menor cantidad

de tiamina y ácido pantoténico28; por lo que se puede considerar que este mosto

requiere ser suplementado con estas vitaminas. Mercedes89 afirma que este aporte

vitamínico tiene un efecto estimulante deseable sobre el crecimiento temprano de las

levaduras, lo que coincide con los datos obtenidos en esta investigación.

Según Jiao92 en investigaciones recientes sobre el análisis de la actividad de la

levadura y la utilización de sustratos de jugos de frutas tropicales como la piña,

papaya y mango se encontró un alto grado de adaptabilidad de las levaduras en estos

sustratos manifestándose la ausencia de una fase de latencia en su ciclo de

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crecimiento; la piña fue la fruta con la que se obtuvo mejores resultados en la

elaboración de vinos de fruta tropical, mientras que para el mango y la papaya se

recomienda aumentar la cantidad de azúcar.

Con respecto a la fase exponencial del crecimiento de S. cerevisiae MIT-L51

en condiciones de fermentación, se observa en las Fig. 01 y 02 que su crecimiento es

similar al inicio de esta fase en los mostos de los tres frutos utilizados; esto se explica

por su contenido de amonio, que además de la cantidad que poseen en forma natural

han sido suplementados con la misma concentración de sulfato de amonio. Según

Mercedes89, Raynal y col.93 cuando las levaduras crecen en presencia de amonio y aminoácidos utilizan preferentemente el amonio, el cual es asimilado rápidamente

evidenciándose en un crecimiento significativo. Este análisis es coherente con los

datos del Anexo 09, donde se observa una caída brusca de los azúcares residuales en

los mostos de maracuyá, piña y uva a inicios de la fase exponencial, los cuales son

utilizados en el crecimiento y en la producción de metabolitos14,18,27,38,94, por lo que

el consumo de azúcares aumenta. También es válido aclarar que, a pesar que el

testigo presenta la misma tendencia de crecimiento en este periodo, esta es menor en

comparación con los mostos de maracuyá, piña y uva, puesto que sólo posee sulfato

de amonio suplementado como fuente nitrogenada.

Así mismo, Ribéreau-Gayon y col.27 consideran que la incidencia de un aporte

de nitrógeno con respecto a la cinética de la fermentación se ve afectada por el

contenido de azúcares del mosto. En la presente investigación los mostos fueron

suplementados con azúcar blanca doméstica hasta 25°Brix. No se adicionaron

mayores cantidades debido a que Ribéreau-Gayon y col27 afirman que elevadas

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30

cantidades de sustrato superiores a 200 g/L interfieren con la finalización de la

fermentación, causando su interrupción espontánea para cantidades de azúcar

residual muy próximas. Independientemente de la suplementación con nitrógeno;

Nishino y col.95 sostienen que durante la fermentación, cuando la concentración de azúcar inicial es elevada, la fase lag se prolonga, asimismo la viabilidad celular y los

recuentos de células viables disminuyen; en base a esta afirmación se puede concluir

que la fermentación se retarda quedando elevados niveles de azúcar residual. Por lo

tanto, no se recomienda fermentar mostos con concentraciones mayores a 45 % (p/p),

porque bajo condiciones osmófilas las levaduras se afectarían al eliminar

bruscamente el agua de sus vacuolas para equilibrar las concentraciones de soluto en

el exterior, y en el interior de la célula ocurriría una plasmólisis96 reducción del poro

y otras alteraciones que disminuyen su crecimiento23, lo cual sugeriría la baja o nula

producción de etanol23. En suma, una tasa de azúcar elevada afectaría el crecimiento

de la levadura y disminuiría la población máxima, reduciéndose la fermentación

incluso antes de la aparición de una cantidad significativa de etanol que agrega su

efecto antiséptico27.

Un aspecto que debe ser analizado es que la suplementación con amonio a

pesar de ser considerada como una buena alternativa para activar tempranamente el

metabolismo de las levaduras27 a la concentración ensayada73, no es capaz de

acelerar el crecimiento de la población en sus inicios en el mosto de maracuyá; esto

quizás se deba a la acción conjunta con los índices inferiores de las vitaminas

anteriormente indicadas (tiamina y ácido pantoténico) que conducen al desarrollo de

una fase de latencia. Esto permite proponer concentraciones mayores de sulfato de

amonio en el enriquecimiento del mosto de maracuyá para acortar la fase de

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adaptación, y suplementar con vitaminas principalmente la tiamina y ácido

pantoténico.

El crecimiento acelerado de S. cerevisiae MIT-L51 hasta las doce horas de

fermentación en los mostos de piña y uva describe la misma tendencia (Fig. 01), esto

es debido que además del nitrógeno, carbono y minerales disponibles28, tienen

mayores concentraciones de tiamina, que el mosto de maracuyá28,88. Como se analizó

anteriormente esta vitamina es importante en el crecimiento de las levaduras. De

igual manera el ácido pantoténico visto en párrafos anteriores contribuye a un mayor

enriquecimiento de los mostos, particularmente en los de piña y uva, donde su

contenido vitamínico es superior frente al mosto de maracuyá28, influyendo

positivamente en el crecimiento celular.

Pasado las doce horas de fermentación, en el mosto de piña se produce mayor

cantidad de biomasa que en el mosto de uva hasta las 36 horas que dura la fase

exponencial (Fig. 01); esta diferencia en el comportamiento del crecimiento se debe a

que la concentración de tiamina es mayor en relación a la uva, pues al tener una

mayor población de levaduras estas sintetizarán mayores cantidades de esta

vitamina24; y a su contenido nutricional28, cuya composición porcentual es

generalmente mayor con respecto a la uva favoreciendo de este modo el crecimiento,

que conlleva a alcanzar la biomasa máxima; a diferencia del mosto de uva cuyo “menor” aporte nutricional genera el término de una fase exponencial con una producción de biomasa reducida, ya que los nutrientes esenciales son los primeros en

agotarse, condicionando así un crecimiento disminuido.

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32

Al considerar los resultados de este ensayo sobre la máxima población de

levaduras alcanzada al término de la fase exponencial, se observa que en las Fig. 01 y

02 el mayor crecimiento de S. cerevisiae MIT-L51 se da en el mosto de maracuyá.

Sin embargo al ser analizado estadísticamente en simultáneo con la biomasa obtenida

en el mosto de piña, mediante la prueba de t de Student para comparación de

promedios, se observó que no existe diferencia significativa entre ambos mostos

(Anexo 16). Por lo tanto, aunque aparentemente muestren valores distintos estos son

iguales. Esto podría explicarse porque a pesar que el mosto de maracuyá contiene la

mayor concentración de nitrógeno asimilable, posee ciertos nutrientes en menor

proporción y sobre todo por el contenido pobre en factores de crecimiento en

relación a la piña28; compensado así un balance nutricional equivalente al aportado por el mosto de piña. No obstante cabría considerar, que debido al desarrollo de una

fase de latencia producida por S. cerevisiae MIT-L51 en el mosto de maracuyá (Fig.

01), las células de levaduras se encuentran metabólicamente activas consumiendo

parte de los nutrientes del medio fermentativo, con la finalidad de sintetizar nuevas

enzimas que le permitan adaptarse a las nuevas condiciones del medio que van

cambiando durante el proceso14,17; por lo cual disminuyen la concentración de

nutrientes del mosto especialmente la fuente carbonada (Anexo 09) y nitrogenada50,

comenzando así con una tasa menor su fase exponencial; en consecuencia su

crecimiento se reduciría llegando al término de esta fase con una biomasa igual a la

obtenida en el mosto de piña ya que estos nutrientes no son utilizados por las

levaduras para crecer exclusivamente en forma logarítmica como sucede en el caso

del mosto de piña.

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Los resultados obtenidos al analizar el crecimiento de S. cerevisiae MIT-L51 en los mostos de maracuyá, piña y uva, permiten afirmar que, las levaduras tienen

necesidades vitamínicas en los procesos fermentativos, debido a que éstas forman

parte de las coenzimas que intervienen en el metabolismo productor de energía, por

lo que el aporte de tiamina y ácido pantoténico contenidos en los mostos tiene un

efecto estimulante sobre el crecimiento y la fermentación89. Así mismo, se señala que

el estudio de los requerimientos nutricionales en las levaduras tiene una influencia

directa sobre su crecimiento, esto en proporción a los nutrientes presentes en los

mostos que van a condicionar e influir en el desarrollo de la fermentación alcohólica;

destacando las sustancias carbonadas, nitrogenadas, y las minerales18,97.

S. cerevisiae encuentra azúcares fermentables en los mostos de maracuyá y piña28,29 y uva18,27, los cuales constituyen la principal fuente de carbono, especialmente glucosa, fructosa y sacarosa contenidos en diferentes concentraciones

según la naturaleza química del mosto. Estos azúcares no sólo están presentes en

forma natural, también pueden ser adicionados intencionalmente mediante

chaptalización18,98. Como se indicó anteriormente, en este ensayo se corrigió el

azúcar de los tres mostos, adicionando sacarosa hasta alcanzar 25 °Brix, debido a

esto la concentración de azúcar no representa una variable en la composición

porcentual de azúcares totales en los mostos utilizados. Ribéreau-Gayon y col27,

Hidalgo18, De Rosa38, Fajardo y Sarmiento9 reportan que las levaduras utilizan estos

azúcares para sintetizar sus componentes estructurales, así como también de fuente

de energía para atender sus funciones vitales; permitiendo el desarrollo y la

constitución de nuevas células de levaduras.

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34

A diferencia de la fuente carbonada, el nitrógeno disponible para el desarrollo

de las levaduras varía según la composición del mosto utilizado, siendo mayor en el

maracuyá, seguido por la uva y finalmente pero muy cercano a este último por la

piña28. La presencia de nitrógeno como nutriente celular durante la fermentación

favorece que la misma se lleve a cabo en forma completa. Si este nutriente no está

presente, el proceso se paraliza aún cuando la concentración inicial de azúcar sea

alta99. Beltran y col.100indican que durante el inicio de la fermentación, las células de levadura mantienen una tasa de división muy rápida y captan la mayoría de fuentes

nitrogenadas disponibles, siendo asimilados y degradados en orden de preferencia, utilizando diferentes mecanismos moleculares (“Represión por catabolito del

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