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Respecto al producto génico de dsrLS (DsrLS) la secuencia deducida reveló que es  una  proteína  compuesta  por  1.767  aminoácidos  que  posee  una  masa  molecular  de  190.039 Da y, por homología con otras proteínas presentes en la base de datos, que se  trata  de  una  glucansacarasa.  Este  tipo  de  enzimas,  como  la  DsrLS,  son  proteínas  con  una  masa  molecular  promedio  de  160.000  Da,  que  presentan  cuatro  dominios  basándose  en  su  secuencia  de  aminoácidos  (apartado  2.1  del  capítulo  de  introducción): i) un péptido señal; ii) una región variable; iii) un dominio catalítico y iii)  un  dominio  C‐terminal,  donde  se  ha  postulado  que  se  encuentran  los  dominios  de  unión al glucano. 

 

Hasta la fecha no se ha conseguido determinar experimentalmente la estructura  3D  completa  de  ninguna  glucansacarasa.  Sólo  se  han  obtenido,  por  estudios  de  cristalización  y  análisis  por  difracción  de  rayos  X,  las  estructuras  parciales  de:  i)  la  proteína DSR‐E‐ΔN de  Lc. mesenteroides NRRL B‐1299 (PDB: 3TTQ); ii) la GTF‐SI de S. 

mutans (PDB: 3AIE); iii) la GTFA‐ΔN de Lb. reuteri 121 (PDB: 4AMC) y iv) la GTF180‐ΔN 

de  Lb.  reuteri  180  (PDB:  3KLK,  4AYG,  3HZ3).  A  partir  de  dichas  estructuras  cristalinas  resueltas, se ha determinado que existen 5 dominios estructurales denominados A, B,  C, IV y V [166]. La nomenclatura de dichos dominios ha sido establecida en base a su  alineamiento estructural con los dominios A, B y C de la familia GH13 (α‐amilasas). Los  otros dos dominios (IV y V) no presentan similitudes estructurales con dominios de la  familia de las GH13, por lo que se utiliza para ellos una nomenclatura diferente [173].  Estos dominios no se encuentran de forma consecutiva en la cadena polipeptídica, sino  que se disponen en forma de “U” siguiendo el patrón V, IV, B, A, C, A, B, IV y V (Fig.  5D).             

  Figura  5D.  Estructura  3D  de  la  glucansacarasa  GTF180‐ΔN  de  Lb.  reuteri  180  (A)  y  modelado  de  la  estructura de DsrLS de Lb. sakei MN1 (B). Se muestran en ambos casos los 5 dominios estructurales (A  en azul, B en verde, C en morado, IV en amarillo y V en rojo), así como las posiciones aminoacídicas de  cada uno de ellos. En el caso de Lb. reuteri ha sido obtenida a partir de los datos de difracción de rayos X  del  cristal.  En  el  caso  de  Lb.  sakei  se  ha  generado  del  modelo  obtenido  a  partir  de  la  estructura  de  GTF180‐ΔN con el programa I‐TASSER [128]    La secuencia de aminoácidos de la proteína DsrLS (desde el 396 al 1395) muestra  una identidad del 48,18 % con los residuos de la proteína GTF180‐ΔN de Lb. reuteri 180  (PDB 3HZ3) (Fig. 5D y anexo II.III). Basado en esta homología ha sido posible establecer  un modelo de la estructura 3D de DsrLS, con excepción de sus regiones N y C‐terminal,  el cual predice la existencia de los mismos dominios existentes en su homónima de Lb.  reuteri 180 (Fig. 5D y 6D).    El dominio A comprende un barril (β/α)8 y contiene el sitio catalítico del enzima.  El  análisis  del  alineamiento  estructural  del  modelo  de  DsrLS  sugiere  que  los  aminoácidos  que  configuran  el  centro  catalítico  del  enzima  constituyen  una  tríada  compuesta por dos residuos aspartatos (D678 y D789) y un residuo glutamato (E716)  (Fig. 7D). 

 

Figura  6D.  Superposición  del  modelo  estructural  de  DsrLS  (en  rojo)  y  de  la  estructura  cristalina  de  GTF180‐ΔN  (en  verde). Superposición  realizada  con  el  programa  CE  [129]  ejecutado  en  el  servidor  http://source.rcsb.org. 

 

 

Figura  7D.  Modelo  de  interacción  de  los  aminoácidos  del  centro  catalítico  de  DsrLS  con  el  sustrato  sacarosa  (en  granate).  Obtenido  por  la  superposición  del  modelo  3D  de  la  proteína  DsrLS  sobre  el  cocristal de la proteína GTF180‐ΔN y su sustrato sacarosa. 

 

Se ha demostrado que la presencia de calcio es esencial para la actividad de la  GTFA‐ΔN de Lb. reuteri 121 [174] y la GTF180‐ΔN de Lb. reuteri 180 [173]. El dominio B,  situado  adyacente  al  dominio  catalítico,  parece  ser  esencial  para  la  función  de  las  glucansacarasas por dos motivos: i) residuos del dominio A y B forman el sitio de unión 

a calcio y ii) algunos bucles del dominio B contribuyen a dar forma al dominio A. Por lo  que respecta al dominio C, aunque esta conservado en las glucansacarasas, todavía no  tiene adscrita una función. El dominio IV conecta los dominios B y V y se ha estipulado  que  podría  actuar  a  modo  de  “bisagra”  para  acercar  el  domino  V  al  centro  catalítico  [175]. El domino V está formado por las regiones N‐ y C‐terminal, que presentan una  serie  de  módulos  estructurales  que  contienen  dos  o  tres  “β2/β3  unidades”  de  aproximadamente 20 residuos. Así pues, en las glucansacarasas existen repeticiones en  tándem  A‐/C‐  o  bien  repeticiones  YG  que  forman  bloques,  en  sus  dos  extremos  terminales, formando el dominio V. En el caso de Lb. sakei MN1, la dextransacarasa no  presenta  repeticiones  de  tipo  A‐/C‐,  pero  si  YG  en  ambos  extremos.  Las  diferencias  entre las glucansacarasas están determinadas por el número de bloques, así como por  la forma en que estos estén conectados y empaquetados debido a su secuencia. 

 

En las especies de Lactobacillus, el extremo N‐terminal presenta entre 200 y 700  residuos y, mutaciones o delecciones en dicha región, pueden alterar su función. Así,  en  el  caso  de  GTFA,  afectan  a  la  relación  entre  la  actividad  hidrolítica  y  la  actividad  transglicosidasa [174]. Por lo que respecta al extremo C‐terminal, está compuesto por  aproximadamente 300  residuos  y  se  le  han  atribuido  implicaciones  en  diferentes  funciones:  i)  en  la  polimerización  o  estructura  del  glucano;  ii)  en  la  transferencia  de  productos  al  centro  catalítico  y  iii)  en  la  localización  de  la  proteína  en  la  superficie  celular. En el caso de la GTFA su delección disminuye la afinidad por la sacarosa [174].  Sin embargo, el papel concreto de esta región C‐terminal todavía se desconoce [176].  Las repeticiones de la región C‐terminal de las glucansacaras presentan homología con  los motivos de unión a la pared celular presentes en las proteínas de unión de colina,  toxinas y otras proteínas de superficie localizadas en varias bacterias [166]. La proteína  DsrLS  presenta  307  aminoácidos  en  su  región  C‐terminal  que  están  presentes  en  menor medida en la proteína GTF124 y Kg15, pero no se encuentran en la proteína de 

Lb.  reuteri  180  (anexo  II.II).  Ha  sido  posible  modelar  el  plegamiento  general  del 

fragmento  C‐terminal  de  DsrLS  (Fig.  8D),  identificado  por  métodos  de  “threading”,  a  partir  de  la  estructura  3D  de  uno  de  los  monómeros  (cadena  A)  de  la  proteína  homodimérica  PcsB  de  S.  pneumoniae [177]  (PBD  4CGK  y  Fig.  8D,  B).  PcsB  es  una 

separación  de  las  células  hijas  y  que  posee  actividad  muralítica  [177].  Cada  cadena  monomérica de PcsB contiene tres regiones características: i) un dominio “coiled‐coil”  (CC,  residuos  41‐266);  ii)  una  región  conectora  (residuos  267‐278)  y  iii)  un  dominio  CHAP  (residuos  279‐392),  que  contiene  el  centro  catalítico  del  enzima.  La  homología  estructural de DsrLS con PcsB incluye los residuos 1422‐1767 de la dextransacarasa y  los  residuos  42‐355  del  enzima  de  S.  pneumoniae.  En  consecuencia,  DsrLS  posee  un  dominio CC, una región conectora y un domino CHAP incompleto y presumiblemente  sin actividad catalítica. En el caso de PcsB el dominio CC está compuesto de cinco α‐ hélices (Fig. 8D, B): i) tres largas hélices curvadas con un número elevado de residuos  (α1, α3 y α4), las dos primeras antiparalelas y la tercera con la misma polaridad que la  primera, y ii) dos hélices cortas (α2 y α5). En el caso de DsrLS (Fig. 8D) existe, además  de  estas  5  α‐hélices,  otra  hélice  extra  localizada  en  el  extremo  N‐terminal  del  fragmento (denominada α1*) con polaridad contraria a la hélice α1. Los dominios CC  contienen  secuencias  repetidas  que  conllevan  a  un  plegamiento,  con  una  estructura  secundaria de tipo α‐hélices incluyendo residuos hidrofóbicos los cuales contribuyen a  la interacción entre cadenas.